La surveillance sanitaire des amphibiens dans les parcs nationaux métropolitains français : présent et futur - GEEFSM
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La surveillance sanitaire des amphibiens dans les parcs nationaux métropolitains français : présent et futur Loïc Palumbo C. Miaud (CEFE, EPHE), S. Larrat (EVAAS), G. Le Loc’h (ENVT), T. Durand (PNE) Avec la participation des Parcs nationaux : des Cévennes, des Ecrins, du Mercantour, des Pyrénées et de la Vanoise 38ieme rencontre du G.E.E.F.S.M Lanslebourg-Val Cenis, France Octobre 2021
3 Ordres : Caudates , Anoures et Gymnophiona Caudates Anoures 3 2 ≥ 570 12 ≥ 5600 24 espèces espèces 130 espèces espèces 2 espèces 2 Hors espèces introduites et envahissantes
Les amphibiens de France métropolitaine ▪ 21 espèces sur 36 présentes dans les PN de montagne ▪ 15 espèces sur 36 absentes ▪ 7 espèces avec zone de répartition limitée ▪ 5 espèces en Corse uniquement 3 ▪ 3 espèces largement réparties hors zones de montagne
Les amphibiens dans les PN de montagne métropolitains ▪ 20 espèces : Des espèces endémiques © B. Trapp © B. Trapp © B. Trapp Des espèces menacées © B. Trapp © Miltos Gikas © Siga 4
La surveillance sanitaire des amphibiens des PN Objectifs de la surveillance: identifier les causes des évènements de mortalité d'amphibiens & suivre la dynamique des 2 grands agents pathogènes (ranavirus, Bd). Finalité de la surveillance : Agir pour la conservation des amphibiens. 8
Protocole de collecte ©Agent PNM – surveillance des amphibiens 2016 Mortalité d’amphibien … individuelle massive 9
Protocole de collecte ©Agent PNM – surveillance des amphibiens 2016 Mortalité d’amphibien … ©Agent PNM – surveillance des amphibiens 2016 individuelle massive … observée lors des tournées des agents … 9
Protocole de collecte … est prélevée … ©Agent PNM – surveillance des amphibiens 2016 Mortalité d’amphibien … ©Agent PNM – surveillance des amphibiens 2016 individuelle massive … observée lors des tournées des agents … 9 … et une fiche est remplie
Protocole d’analyse qPCR : recherche de ranavirus 10 Protocole d’analyse des échantillons par qPCR pour la recherche de ranavirus
La surveillance en quelques chiffres ❖ Les parcs indemne de Bd 2018 RANAVIRUS • Mercantour (2009) 2017 2015 • Cévennes (2011) 2017 • Vanoise ❖ Suivi Bd PNP : Ecolab ❖Projet Salamanders 2017 : 2011 Bsal absent de France 11
La surveillance des amphibiens dans les P.N. français : la situation actuelle L’exemple du P.N. Mercantour et des ranavirus 12
Les données disponibles Ubaye ▪ 8 ans de données : 2011 - 2018 St Etienne de Tinée + St Sauveur s/ Tinée Haut- Verdon ➔ 121 (56+65) prélèvements analysés ▪ Surtout en zone cœur du PNM Cians- Vésubie Roya – ▪ 74 individus positifs aux ranavirus Var Bévéra ▪ 47 individus négatifs ▪ 19 variables testées : facteurs biotiques et abiotiques 13
Importance de la voie Type de contamination Les ranavirus Voies principales Contamination directe et les amphibiens Voies secondaires Voies possibles Contamination environnementale Pour certains ranavirus seulement Winzeler et al, 2014, « Ranaviruses : emerging threat to amphibians » Purdue Extension. FNR-485-W ©L. Zimmermann, 2015. Lac des merveilles, PNM Rosa et al, 2017. « Impact of asynchronous emergence of two lethal pathogens on amphibian assemblages». Scientific reports
La température : un facteur de risque bien connu A ➢ Une augmentation du risque ■ Valeur moyenne entre les différentes d’infection quand la température localisations augmente jusque 18-25°C Taux d’infection ○ Valeur pour chaque localisation ✓ Optimum de température du virus ✓ Modulation immunitaire de l’hôte Température mensuelle de l’air ➢ Un effet à prendre en compte pour Augmentation du risque d’infection par des ranavirus en fonction de la température les autres analyses 15
Un risque d’infection augmenté en zone pastorale? Taux d’infection par des ranavirus 1 ➢ Un risque plus important d’infection en zone pastorale ✓ Résultat similaires en 2007[1] ✓ Première description en zone protégée 0 Sans pastoralisme Avec pastoralisme ➢ A confirmer par d’autres études Augmentation du risque d’infection sur les sites avec une activité pastorale 16 [1] M. J. Gray, D. L. Miller, A. C. Schmutzer, et C. A. Baldwin. 2007. Diseases of Aquatic Organisms 77 (septembre): 97-103. « Frog virus 3 prevalence in tadpole populations inhabiting cattle-access and non-access wetlands in Tennessee, USA ».
Évaluation de la surveillance sanitaire des amphibiens dans les PN et perspectives La méthode 17
La méthode OASIS ▪ Évaluation externe ▪ Semi-quantitatif ▪ Entretiens ▪ 78 critères ▪ Grilles de notations ▪ ANSES 2011 Procédure d’évaluation des dispositifs de surveillance épidémiologique avec OASIS, Plateforme ESA
Nom et Prénom Affiliation Date (2021) Jérôme Cavailhes Joël Blanchemain Elodie Antoine PNV 19 février Les entretiens Nicolas Gomez Valérie Hagry Jocelyn Fonderflick Bruno Descaves PNC 24 février ▪ 28 personnes Benoit Deffrennes Marie-France Leccia 25 février Sophie Roux 01 mars Marion Bensa PNM 02 mars ▪ 5 Parcs de montagne de France métropolitaine Anthony Turpaud 01 mars Raphaël Lurion 05 mars + Labo central (CEFE) Jérôme Lafitte PNP 22 mars Germain Besson + Partenaire local : SAGIR Yoann Bunz Michel Bouche Emmanuel Icardo 15 mars Jérôme Foret ▪ 1-2 membres de l’équipe d’évaluation : Cyril Coursier PNE Thierry Maillet Marc Corail Membres externes au réseau Membres internes au réseau 08 mars Régis Jordana Loïc Palumbo, ENVT Thierry Durand, PNE Sylvain Larrat, pôle EVAAS Claude Miaud, CEFE Olivier Warluzelle 11 mars Claude Miaud 12 mars Véronique Arnal CEFE 26 février 19 Anouck Decors Lorette Hivert SAGIR 08 avril
Évaluation de la surveillance sanitaire des amphibiens dans les PN et perspectives Les résultats 20
Évaluation OASIS : Les résultats ▪ 10 sections évaluées ☺ Les points forts ▪ Organisation de terrain ▪ Laboratoire (sauf délais) Les limites ▪ L’organisation centrale ▪ La gestion des données ▪ Communication 21 Représentation des notes OASIS par sections
Évaluation OASIS : Les résultats 22 Représentation des notes par attributs
Évaluation OASIS : Les résultats « mortalité anormale » = « Toute mortalité [sur des] cadavres non blessés et non consommés », ou « toutes les mortalités, quel qu’en soit la cause, dans le doute », ou «mortalités massives, autres que liées à la reproduction au printemps ». Représentation des notes par attributs 23
Évaluation OASIS : Les résultats « mortalité anormale » = « Toute mortalité [sur des] cadavres non blessés et non consommés », ou « toutes les mortalités, quel qu’en soit la cause, dans le doute », ou «mortalités massives, autres que liées à la reproduction au printemps ». Bonne implication des agents = bonne couverture du territoire Fonctionnement local simple MAIS hétérogène entre parcs Représentation des notes par attributs 23
Évaluation OASIS : Les résultats « mortalité anormale » = « Toute mortalité [sur des] cadavres non blessés et non consommés », ou « toutes les mortalités, quel qu’en soit la cause, dans le doute », ou «mortalités massives, autres que liées à la reproduction au printemps ». Bonne implication des agents = bonne couverture du territoire Fonctionnement local simple MAIS hétérogène entre parcs Manque de valorisation des données pour répondre aux objectifs et à la finalité de gestion Représentation des notes par attributs 23
Évaluation OASIS : Les résultats « mortalité anormale » = « Toute mortalité [sur des] cadavres non blessés et non consommés », ou « toutes les mortalités, quel qu’en soit la cause, dans le doute », ou «mortalités massives, autres que liées à la reproduction au printemps ». Bonne implication des agents = bonne couverture du territoire Fonctionnement local simple MAIS hétérogène entre parcs Manque de valorisation des données pour répondre aux objectifs et à la finalité de gestion Mode de financement et de fonctionnement du laboratoire → Délais incompatibles avec les objectifs Manque de moyens du réseau « financé par des programmes européens [qui] sont non pérennes 23 et donc une fausse solution [pour la surveillance sanitaire] »
Évaluation de la surveillance sanitaire des amphibiens dans les PN et perspectives Quel futur ? 24
II. Évaluation OASIS : Les recommandations 25
II. Évaluation OASIS : Les recommandations Formaliser Vers un outil unique : Epifaune 3.0 ? Uniformiser Communiquer Récupérer des données ? o Interne Informer sur les bonnes pratiques o Externe Pérenniser Importance des suivis sur le long terme o Financement Priorisation ? o Fonctionnement 26
II. Évaluation OASIS : Les recommandations Laboratoires de diagnostic Formaliser Anatomopathologie Histologie Uniformiser Diversification Fiches et BDD uniques Communiquer Priorisation Adapter toutes espèces o Interne o Externe Initiale & continue Supports simples et actualisés Pérenniser o Financement o Fonctionnement Indicateurs de performance 27
Conclusion 28
Conclusion ✓ Un rôle essentiel des PN dans la surveillance sanitaire des amphibiens ✓ De nombreux points forts mis en évidence, mais …. ✓ Un besoin d’harmonisation entre parcs ✓ Un manque de laboratoires et d’expertise vétérinaire ✓ Un besoin de moyen 29
Conclusion ✓ Un rôle essentiel des PN dans la surveillance sanitaire des amphibiens ✓ De nombreux points forts mis en évidence, mais …. ✓ Des points à améliorer ! ➢ Des perspectives pour les autres espaces protégés 30
Merci pour votre attention ! Des questions ?
Références J.-M. Probst, et A. Turpin. 1995. « Check-list des amphibiens et des reptiles de La Réunion, incluant les espèces migratrices observées depuis 1950 à 1995 ». Bulletin Phaethon 2: 73-74. M. BREUIL 2002. — Histoire naturelle des Amphibiens et Reptiles terrestres de l'archipel Guadeloupéen : Guadeloupe, Saint-Martin, Saint-Barthélemy. Muséum national d'Histoire naturelle, Paris, 348p. (Patrimoines naturels ; 54). D. L. Miller, S. Rajeev, M. Brookins, J. Cook, L. Whittington, et C. A. Baldwin. 2008. « Concurrent Infection with Ranavirus, Batrachochytrium dendrobatidis, and Aeromonas in a Captive Anuran Colony ». Journal of Zoo and Wildlife Medicine 39 (3): 445-49. A. Balseiro, K. P. Dalton, A. del Cerro, I. Marquez, A. A. Cunningham, F. Parra, J. M. Prieto, et R. Casais. 2009. « Pathology, isolation and molecular characterisation of a ranavirus from the common midwife toad Alytes obstetricans on the Iberian Peninsula ». Diseases of Aquatic Organisms 84 (avril): 95-104. A. Balseiro, K. P. Dalton, A. del Cerro, I. Márquez, F. Parra, J. M. Prieto, et R. Casais. 2010. « Outbreak of common midwife toad virus in alpine newts (Mesotriton alpestris cyreni) and common midwife toads (Alytes obstetricans) in Northern Spain: A comparative pathological study of an emerging ranavirus ». The Veterinary Journal 186 (2): 256-58. M. Kik, A. Martel, A. Spitzen-van der Sluijs, F. Pasmans, P. Wohlsein, A. Gröne, et J. M. Rijks. 2011. « Ranavirus-associated mass mortality in wild amphibians, the Netherlands, 2010: a first report ». Veterinary Journal 190 (2): 284-86. A. Martel, A. Spitzen-van der Sluijs, M. Blooi, W. Bert, R. Ducatelle, et al. 2013. « Batrachochytrium salamandrivorans sp. nov. causes lethal chytridiomycosis in amphibians ». Proceedings of the National Academy of Sciences 110 (38): 15325-29. M. J. Gray, et V. G. Chinchar, éd. 2015. Ranaviruses. Cham: Springer International Publishing. MNHN. 2015. « La liste rouge des espèces menacées en France : Reptiles et amphibiens de France métropolitaine ». UICN, comité français. https://uicn.fr/liste-rouge-reptiles-amphibiens/. A. C. Stöhr, A. López-Bueno, S. Blahak, M. F. Caeiro, G. M. Rosa, A. P. Alves de Matos, A. Martel, A. Alejo, et R. E. Marschang. 2015. « Phylogeny and differentiation of reptilian and amphibian ranaviruses detected in Europe ». PLOS ONE 10 (2). C. Miaud, F. Pozet, N. Curt Grand Gaudin, A. Martel, F. Pasmans, et S. Labrut. 2016. « Ranaviruse causes mass die-offs of alpine amphibians in the southwestern alps, france ». Journal of Wildlife Diseases 52 (2): 242-52. J. E. Earl, J. C. Chaney, W. B. Sutton, C. E. Lillard, A. J. Kouba, et al. 2016. « Ranavirus could facilitate local extinction of rare amphibian species ». Oecologia 182 (2): 611-23. MNHN. 2017. « La liste rouge des espèces menacées en France : Faune vertébrée de Guyane - amphibiens et reptiles ». UICN, comité français. K. Mühldorfer, G. Wibbelt, C. A. Szentiks, D. Fischer, H. C. Scholz, M. Zschöck, et T. Eisenberg. 2017. « The role of ‘atypical’ Brucella in amphibians: are we facing novel emerging pathogens? » Journal of Applied Microbiology 122 (1): 40-53. G. M. Rosa, J. Sabino-Pinto, T. G. Laurentino, A. Martel, F. Pasmans, et al. 2017. « Impact of asynchronous emergence of two lethal pathogens on amphibian assemblages ». Scientific Reports 7 (1). S. Al Dahouk, S. Köhler, A. Occhialini, M. P. Jiménez de Bagüés, J. A. Hammerl, et al. 2017. « Brucella Spp. of Amphibians Comprise Genomically Diverse Motile Strains Competent for Replication in Macrophages and Survival in Mammalian Hosts ». Scientific Reports 7 (1). F. C. Origgi, B. R. Schmidt, P. Lohmann, P. Otten, R. K. Meier, et al. 2018. « Bufonid herpesvirus 1 (BfHV1) associated dermatitis and mortality in free ranging common toads (Bufo bufo) in Switzerland ». Scientific Reports 8 (1). S. Allain, et A. Duffus. 2019. « Emerging infectious disease threats to European herpetofauna ». Herpetological Journal, no Volume 29, Number 4 (octobre): 189-206. M. von Essen, W. T. M. Leung, J. Bosch, S. Pooley, C. Ayres, et S. J. Price. 2020. « High Pathogen Prevalence in an Amphibian and Reptile Assemblage at a Site with Risk Factors for Dispersal in Galicia, Spain ». PLOS ONE 15 (7). DEAL de la Martinique. 2020. « Réglementation amphibiens ». 4 août 2020. http://www.martinique.developpement-durable.gouv.fr/amphibiens-a1414.html. OFB, et MNHN. 2021. « Liste rouge des espèces menacées en France : 13 ans de résultats ». UICN, comité français. https://uicn.fr/bilan-13-ans-liste-rouge-france/. N. Galt, M. Atkinson, B. Glorioso, H. Waddle, M. Litton, et A. Savage. 2021. « Widespread Ranavirus and Perkinsea infections in Cuban Treefrogs (Osteopilus septentrionalis) invading New Orleans, USA ». Herpetological Conservation and Biology. N. Rouzic, L. Desmier, M.-E. Cariou, E. Gay, J. T. Foster, et al. 2021. « First Case of Brucellosis Caused by an Amphibian-type Brucella ». Clinical Infectious Diseases 72 (9): In press .
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