Effet de digestion gastro-intestinale in vitro sur les composés phénoliques et l'activité antioxydante d'ail triquètre Allium triquetrum L.

Laib et al., J. Appl. Biosci. Vol: 171, 2022 Effet de digestion gastro-intestinale in vitro sur les composés phénoliques et
l’activité antioxydante d’ail triquètre Allium triquetrum L.

 Journal of Applied Biosciences 171: 17821 – 17837
 ISSN 1997-5902

 Effet de digestion gastro-intestinale in vitro sur les
 composés phénoliques et l’activité antioxydante d’ail
 triquètre Allium triquetrum L.
Imen LAIB1, 2*, Hanane KARIT1, Rahma BOUZERDOUNA1, Fatima KETTOUCHE1,
Malika BARKAT2
1
 Département des Sciences de la Nature et de la Vie, Faculté des Sciences, Université 20 Août 1955, Skikda
Algérie
2
 Laboratoire BIOQUAL, INATAA, Université Constantine 1, Algérie
*mina.laib@gmail.com

Submitted on 3rd February 2022. Published online at www.m.elewa.org/journals/ on 31st March 2022
https://doi.org/10.35759/JABs.171.5

RÉSUMÉ
Objectifs : L’objectif de cette étude est d’évaluer l’effet de la digestion gastro-intestinale in vitro
sur vitro sur la teneur des polyphénols totaux, des flavonoïdes, des tanins et le potentiel antioxydant
des parties comestibles (feuilles et bulbes) d’Allium triquetrum (Ail triquètre).
Méthodologie et résultats : Les teneurs en polyphénols totaux, en flavonoïdes et en tanins de la
plante non digérée et digérée ont été évaluées par dosage spectrophotométrique. La détermination
de l’activité antioxydante a été effectuée par deux méthodes DPPH, ABTS. Les résultats obtenus
montrent que la digestion gastro-intestinale in vitro réduit les teneurs des polyphénols totaux , des
flavonoïdes et des tanins. Une forte capacité antioxydante a été obtenue pour les extraits d’ail
triquètre. L’étude de l’effet de la digestion in vitro sur l’activité antioxydante par la méthode DPPH
montre une augmentation de cette dernière par rapport à l’extrait de l’ail triquètre non digérée.
Cependant, la méthode ABTS a abouti à des effets différents selon la phase de digestion, la phase
salivaire semble diminuer l’activité antioxydante. Par contre, une augmentation de celle-ci a été
notée durant la phase gastrique suivie d’un abaissement au cours de la phase intestinale. La phase
gastrique a révélé la meilleure activité pour les deux méthodes de détermination du pouvoir
antioxydant.
Conclusion et applications : La composition phénolique et l’activité antioxydante d’ail triquètre
ont été modifiées de manière significative pendant la digestion in vitro. Les polyphénols totaux,
les flavonoïdes et les tanins étaient instables dans l’environnement gastro-intestinal tandis que le
potentiel antioxydant a été relativement maintenu après la digestion.
Les résultats obtenus dans cette étude pourraient servir comme donnés préliminaires à des analyses
futures concernant l'amélioration de la bioaccessibilité des ingrédients bioactifs dans le corps
humains.
Mots clés : Allium triquetrum, digestion gastro-intestinale in vitro, polyphénols totaux,
flavonoïdes, tanins, activité antioxydante

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l’activité antioxydante d’ail triquètre Allium triquetrum L.

ABSTRACT
Objective :The objective of this work is to evaluate the effect of in vitro gastro-intestinal digestion
on the total polyphenol content, flavonoids, tannins and the antioxidant potential of edible parts
(leaves and bulbes) of Allium triqutrem (three cornered leek)
Methodology and Results: The contents of total polyphenols, flavonoids and tannins of the digested
and undigested plant were determined by spectrophoyometric methods. The determination of
antioxidant activity was carried out by two methods DPPH and ABTS. The results obtained show
that in vitro gastrointestinal digestion decreases the contents of total polyphenols, flavonoids and
tannins. Allium triquterm extracts reveals a strong antioxidant activity which increases after gastro-
intestinal digestion for the DPPH method. However, the ABTS method Results obtained for the
three phases of digestion are different .salivary phase cause a decrease in the antioxidant activity.
However, antioxidant activity increase during the gastric phase then increases after the intestinal
digestion. The gastric phase revealed the best activities for the two methods of antioxidant activity
evaluation.
Conclusion and applications of results: The phenolic composition and antioxidant activity of the
three cornered leek were significantly altered during invitro digestion. Total polyphenols,
flavonoids and tannins were unstable in the gastrointestinal environment while the antioxidant
potential was relatively maintained after digestion. The results obtained in this study could be used
as preliminary data for future analyses concerning the improvement of bioaccessibility of bioactive
ingredients in the human body.
Keywords: Allium triquetrum, in vitro gastro-intestinal digestion, total polyphenols content,
flavonoids, tannins, antioxidant activity.

INTRODUCTION
Allium triquetrum L. (Alliaceae), également vertes centrales, et son odeur distinctive
connu sous le nom de poireau à trois angles, d’oignon (Parsons et Cuthbertson, 1992 ;
oignon triangle ou ail à tige triangulaire, est Walsh et Entwisle, 1994). A. triquetrum L. est
une plante à fleurs, vivace, bulbeuse, originaire signalé dans la région de Tell, mais assez rare
de la région méditerranéenne occidentale et dans l'ouest de l'Algérie. Outre les aspects
centrale (Parsons et Cuthbertson, 2001 ; Blood ornementaux, l'oignon triangulaire a été
,2001) étant couramment trouvée dans les envisagé pour les applications culinaires, où
écosystèmes des zones humides. Plante les feuilles peuvent être utilisées pour
annuelle, à tige molle triquètre (triangulaire, à aromatiser la pâtisserie ou assaisonner les
angle aigus) de 10 à 40 cm, épaisse, se rétrécit salades en Kabylie , alors que les jeunes
progressivement de la base jusqu’à feuilles et le cœur des racines sont consommés
l’inflorescence. Les feuilles sont glabres, crus ou cuits à la vapeur De plus, les fleurs d'A.
planes dessus et aiguës dessous. Les fleurs sont Triquetrum L. sont traditionnellement utilisées
blanches en clochettes pendantes, elle en médecine traditionnelle, en particulier pour
comporte 6 à 12 fleurs pédicellées la cicatrisation des plaies (Rabah et al., 2020).
(généralement penchée du même côté). Le Certaines études ont déjà lié les bienfaits pour
bulbe est capsulaire, blanc, petit, tendre et à la santé d’A. Triquetrum L. à la présence de
odeur de poireau. L’identification d’A. métabolites secondaires spécifiques, en
triquetrum n’est pas difficile. L’ail triquètre se particulier les composés phénoliques En fait,
distingue des autres espèces du genre Allium les bulbes et les fleurs d'oignon triangulaire
par la forme à trois angles de la tige florifère, sont riches en flavonols, comme les glycosides
les fleurs aux tépales blancs et aux bandes de kaempférol, et les saponines. Les propriétés

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antioxydantes puissantes d’ail triquitère est propriétés antioxydantes, a été l'un des sujets
étroitement lié à ces composés phénoliques plus largement examinés au cours de la
(Corea et al., 2003 ; Maccelli et al., 2020). dernière décennie. Tel est le cas avec une
Pour obtenir un effet bénéfique de cette plante grande variété de fruits, y compris les agrumes
sur la santé, il faut que ces polyphénols doivent (Chen et al., 2014) , différents types des
être stables durant la digestion pour atteindre baies(Liang et al., 2012), tomate (Talens et al.,
la circulation sanguine à travers la paroi 2016 ), grain de raisin ( Chen et al., 2014),
intestinale (Soriano Sancho et al., 2015). Les Pomme ( Bouayed et al., 2012) et figues
polyphénols sont ingérés sous forme de (Kamiloglu et Capanoglu, 2013).Ainsi que les
mélanges complexes immergés dans une extraits phénoliques de la pulpe de la caroube
matrice alimentaire. Donc il est important de (Ydjedd et al., 2017). Néanmoins, il ya un
déterminer comment ce processus de digestion manque d’études qui ont abordé l’effet de la
affecte les polyphénols et leur stabilité car cela, digestion in vitro sur les polyphénols d’Allium
à son tour, affectent leur bioaccessibilité à triquetrum. L’objectif de cette étude s’articule
l’absorption ainsi que leurs effets bénéfiques sur l’évaluation de l’effet de la digestion
possibles sur les cellules qui tapissent l’intestin gastro-intestinale in vitro sur le contenu en
(Kamiloglu, 2016). L'effet de la digestion composés phénoliques et le potentiel
gastro-intestinale in vitro sur la stabilité des antioxydant des parties comestibles (feuilles et
composés polyphénoliques, et sur leurs bulbes) d’ail triquètre.

MATÉRIEL ET MÉTHODES
Ce travail a été effectué au laboratoire de les échantillons ont été débarassés des débris
Biochimie, Faculté des Sciences, Université 20 (parties mortes, organes altérés) ,
Août 1955 Skikda, Algérie. L’objectif de cette soigneusement lavés , ensuite les organes de
étude est de déterminer l’effet de la digestion la plante sont séparés et découpés en petits
in vitro sur la teneur des composés phénoliques morceaux . Les parties comestibles de la plante
(polyphénols totaux, flavonoïdes, tanins) et (feuilles et les bulbes fraîches) ont fait l’objet
l’activité antioxydante de l’ail triquètre Allium de notre investigation.
triquetrum L. Extraction de composés phénoliques :
Matériel végétal : La plante utilisée dans cette 206.4g d’échantillon (feuilles et bulbes) ont été
étude est l’ail triquètre Allium triquetrum L. Le additionnés à 100 ml de méthanol 80℅, le
choix de cette plante comme sujet d’étude dans mélange est agité pendant 1h et ensuite
le présent travail a été guidé non seulement macéré pendant24 h .Les extraits obtenus sont
par les diverses applications traditionnelles et filtrés, les feuilles et les bulbes d’ail triquètre
culinaires qui en sont répertoriées, mais aussi ont été ré extraites trois fois et les extraits
par le fait qu’il s’agit d’une espèce combinés ont été employés pour les
méditerranéenne commune dans le Nord de expériences. Ensuite, l’échantillon a été
l’Algérie, surtout dans le Tell, en plus elle est centrifugé à 4500 trs/mn pendant 30 minutes et
relativement peu étudiée. L’échantillonnage a le surnageant obtenu est considéré comme
été réalisé manuellement le 24 Février 2021 de extrait des parties comestibles d’ail triquètre
la région de Djenan el Anab, Commune : Beni non digéré (Elfalleh et al. ,2012).
bechir(Longitude : 6.983°, Latitude : 36.8°, Digestion gastro-intestinale in vitro : Les
Altitude : 198m) située à 13 Km de la ville de parties comestibles (feuilles et bulbes) d’ail
SKIKDA, Algérie, et ils ont été placés dans des triquètre ont été soumise successivement à la
sacs en plastique stériles et amenés au digestion buccale, gastrique et intestinale
laboratoire pour analyse .,Avant l’utilisation, suivant une nouvelle méthode de digestion

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l’activité antioxydante d’ail triquètre Allium triquetrum L.

statique normalisée basée sur des conditions composent les différentes phases de la
physiologiquement pertinentes développées digestion utilisées dans cette étude sont
par Minekus et al. (2014) et modifiées par présentés dans le tableau 1.
Ydjedd et al., (2017). Les liquides qui

Tableau 1 : Composition de trois liquides de la digestion (orale, gastrique et intestinale) (Ydjedd
et al., 2017).
 SOLUTIONS Solution ajoutée pour Solution ajoutée pour Solution ajoutée pour
 préparer 250ml de préparer 250ml de préparer 250ml de
 liquide salivaire liquide gastrique liquide intestinale
 (LS) (ml) (LS) (ml) (LS) (ml)
 NaCl (2M) - 23.6 19.2
 KH2PO4 (0,5 M) 7.4 1.8 1.6
 NaHCO3 (1M) 13.6 25 85.8
 KCL (0,5 M) 30.2 13.8 13.6
 MgCl2(H2O) 1 0.8 2.2
 6(0,15M)
 HCl (6M) 0.18 2.6 2.8
 NH4 (CO3)2 0.12 1 -

La phase orale : Pour la simulation de la volume final a été complété par l'eau distillée
digestion orale, on a mélangé 4 g d’échantillon jusqu'à l’obtention de 250ml. Le mélange final
(ail triquètre à l’état frais) avec 17,5 ml de a ensuite été incubé sous agitation pendant 2 h
fluide salivaire ,75 µl de CaCl2 (H2O) 6 0,3 M à 37 ° C. La phase intestinale (PI) a été
et 15mg d'α-amylase. Ensuite le mélange est centrifugée pendant 30 minutes à 4500 tr/min.
incubé dans un bain marie pendant 2 min à 37 Les surnageants obtenus après centrifugation
° C, puis centrifugé avec une centrifugeuse sont considérés comme extraits de la plante
Sigma à 4500tr/mn pendant 30 minutes. 10 ml digérée et ils sont réservés pour effectuer les
de la phase orale (PO) sont prélevés pour les différentes analyses.
analyses ultérieures. Dosage des composés phénolique totaux : Le
La phase gastrique : La digestion gastrique dosage des polyphénols totaux a été réalisé par
s'est poursuivie par l'addition immédiate de la méthode de Folin-Ciocalteu(FC) décrite par
10ml de liquide gastrique, de 20 µl de CaCl2 Waterhouse (1999).avec quelques
(H2O) 6 à 0,3 M à 10 ml de la phase orale. modifications. 5ml de chaque extrait (extrait de
Ensuite, le pH est ajusté à 3. Après addition la plante non digérée et les trois extraits des
de 0.16 g de pepsine, le volume final a été phases de digestion : salivaire, gastrique et
complété à 250 ml par l’eau distillée, le intestinale) ont été mélangés avec 0,4ml du
mélange a été incubé sous agitation pendant 2 réactif Follin-Ciocalteu et 1,2 ml de Na2CO3 à
h à 37 ° C puis la PG a été centrifugée pendant 2%. Après agitation et incubation du mélange
30 minutes à 4500 tr/min. À la fin de la réactionnel à l’obscurité et à température
digestion gastrique 10 ml ont été récupéré. ambiante pendant deux heures, la lecture des
La phase intestinale : La digestion intestinale absorbances est mesurée à 760 nm. Les
était simulée par l’ajout de 39 ml de liquide résultats sont exprimés en mg équivalent
intestinale, 200 µl de CaCl2 à 0,3 M et 0.16 g d’acide gallique par g de matière fraiche en se
de sels biliaires dans le liquide intestinale. référant à la courbe d’étalonnage de l’acide
Après ajustement du pH à 8 avec NaOH 1 M, gallique réalisée avec 6 valeurs de
0.25g de pancréatine ont été ajoutés, ensuite, le concentrations (variant de 0 à 1 mg/ml). Le

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contenu phénolique total d’extrait est calculé C0 : la concentration de l’extrait obtenue à
par la formule suivante : partir de la courbe d’étalonnage en mg EQ/ml
 V0 : le volume final de la solution (volume des
 réactifs + le volume de la solution fille) en ml
 = F : le facteur de dilution= Vm /Vf dont Vm est
 
 le volume de la solution mère en ml et Vf est
Où : le volume de la solution fille prélevé en ml.
QP : la teneur en polyphénols en mg EAG/ g Dosage des tanins : 2ml d’extrait d’ail
de matière fraîche triquètre , liquide salivaire ,liquide gastrique et
M : la masse de la plante utilisée pour liquide intestinale sont additionnés à un
l’extraction volume de 2 ml du réactif butanol-HCL (77mg
C0 : la concentration de l’extrait obtenue à FeSO4 dissouts dans 500ml butanol-
partir de la courbe d’étalonnage en mg HCL(2 ;3)) . Le mélange est ensuite incubé à
EAG/ml 95°C pendant 15 minutes .Les tanins se
V0 : le volume final de la solution (volume des dissocient sous l’effet de la chaleur en milieu
réactifs + le volume de la solution fille) en ml acide donnant une coloration spécifique,
 F : le facteur de dilution= Vm /Vf dont Vm est l’absorbance est mesuré à 530 nm .La
le volume de la solution mère en ml et Vf est concentration des tanins est déterminée à partir
le volume de la solution fille prélevé en ml de la courbe d’étalonnage d’acide tannique .La
(Hebi et Eddouks, 2015) teneur en tanins est exprimée en mg EAT/ g de
Dosage des flavonoïdes totaux : La matière fraîche.
détermination des flavonoïdes totaux a été La concentration des tanins est mesurée selon
réalisée été selon la méthode décrite par l'équation suivante :
Dehpour et al. (2009). 5 ml de chaque extrait 
(extrait de la plante non digérée et des trois des =
 
phases de digestion : salivaire, gastrique et Où :
intestinale) sont ajoutés à 1,5 ml d’éthanol 80 QT : la teneur en tanins en mg EAT/ g de
% et 0,1 ml d’AlCl3 à 10 % avec 0,1 ml matière fraîche
d’acétate de sodium 1 M. Après incubation du m : la masse de la plante utilisée pour
mélange à l’obscurité et à température l’extraction
ambiante pendant 30 min, l’absorbance est C0 : la concentration de l’extrait obtenue à
mesurée à 415 nm. Les résultats sont exprimés partir de la courbe d’étalonnage en mg EAT/ml
en mg équivalent quercetine/ g de matière V0 : le volume final de la solution (volume des
fraîche en se référant à la courbe d’étalonnage réactifs + le volume de la solution fille) en ml
de la quercetine (de 0 à 1 mg /ml). La F : le facteur de dilution= Vm /Vf dont Vm est
concentration des composés flavonoïdes est le volume de la solution mère en ml et Vf est
calculée selon l'équation suivante : le volume de la solution fille prélevé en ml.
 Détermination de l'activité antioxydante :
 Compte tenu de la complexité des mécanismes
 d’oxydation, il n’existe pas de méthode unique
 qui permettrait de mesurer le potentiel
 =
 antioxydant d’un échantillon. C’est pourquoi,
Où :
 on utilise différents tests pour déterminer
QF : la teneur en tanins en mg EQ/ g de matière
 l’activité antioxydante. Les antioxydants
fraîche
 peuvent piéger les radicaux libres par deux
m : la masse de la plante utilisée pour
 mécanismes : par transfert d’électron ou par
l’extraction
 transfert d’atome d’hydrogène. Les méthodes

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DPPH● et ABTS●+) permettent le transfert Détermination de l’activité antioxydante
d’un atome d'hydrogène. Le DPPH● est un par la méthode ABTS
radical commercial directement utilisable, La méthode de piégeage du radical libre
alors que l’ABTS●+ doit être généré par une ABTS° suivie est celle décrite par Re et al.
réaction enzymatique ou chimique. La (1999) avec légère modifications. Pour la
solubilité des deux radicaux est différente : préparation de la solution d’ABTS, 5 ml d'eau
ABTS●+ est soluble en milieux organique et ont été mélangé avec 19,2mg d'ABTS et 3,3
aqueux tandis que DPPH● est soluble mg de K2S2O8 ensuite le mélange est incubé à
uniquement dans des solvants organiques (plus l’obscurité pendant 16h. 16μld’ABTS sont
particulièrement alcoolique). Le test à ajoutés à 1 ml des différentes concentrations de
l’ABTS●+ permet donc l'étude de tous les solutions d’extrait digérée et non digérée (0-1
agents hydrophiles et lipophiles. Le test au mg /ml). L’incubation se fait à l’obscurité
DPPH● est plus restrictif. pendant 10 minutes et la lecture est effectuée à
Détermination de l’activité anti oxydante 734nm.
par la méthode DPPH : Une solution de L’activité anti oxydante a été calculée en
DPPH a été préparée par solubilisation de 6mg utilisant la formule suivante :
de DPPH dans 100 ml de méthanol. 160 μl de − é 
DPPH sont ajoutés à 1 ml des différentes % = 
 
concentrations de solutions d’extrait de la
plante digéréé et non digérée (0-1 mg/ml). A blanc : Absorbance du blanc (ABTS dans
L’incubation est à l’obscurité pendant 2 heures l’éthanol)
et la lecture se fait à 517nm. Les résultats ont A échantillon : Absorbance du composé
été exprimés par la moyenne de trois mesures d'essai
séparées ± écart type. Les pourcentages d’inhibition du radical
Le pouvoir d’inhibition est exprimé en % et ABTS ont été tracés en fonction des
déterminé en appliquant la formule suivante : concentrations d’extrait pour déterminer
 l'index IC50.
 − é Analyse statistique : Les moyennes plus ou
 % = moins l’écart type des trois répétitions ainsi
 
 que les représentations graphiques ont été
A blanc : Absorbance du blanc (DPPH dans réalisées par Excel 2010. Les moyennes one
l’éthanol). été comparées par analyse de variance
A échantillon : Absorbance du composé ANOVA à un seul facteur suivi par test Post
d'essai. hoc - Tukey à l’aide du logiciel SPSS (IBM
Les concentrations d’extrait en fonction des Corp. Released 2017. IBM SPSS Statistics for
pourcentages du DPPH inhibé, ont été tracées Windows, Version 25.0. Armonk, NY: IBM
afin d'obtenir l'index IC50. Ce paramètre est Corp.). Les lettres en exposant ; a, b, c, d
défini comme la concentration d'antioxydant indiquent une différence significative au seuil
nécessaire pour inhiber 50% du radical libre de signification 0,05.
DPPH• (Sharififar et al., 2007).

RÉSULTATS ET DISCUSSION
Teneurs en polyphénols totaux, flavonoïdes d’ail triquètre non digérée sont consignés dans
et tanins de la plante non digérée Les teneurs la Fig.1
des polyphénols totaux, flavonoïdes et tanins

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 40
 Taux de composés
 phénoliques 30

 20

 10

 0
 Polyphénols totaux (µg Flavonoides (µg EQ/g de MF) Tanins (µg EAT/MF)
 EAG/g de MF)

Fig.1 : Teneurs en polyphénols totaux, flavonoïdes et tanins d’ail triquètre non digérée

Les résultats obtenus indiquent que les teneurs HPLC a permis d’identifier les flavonoïdes
en polyphénols totaux, flavonoïdes et tanins suivant : quercétine, naringenine, naringine 7-
sont de 35.69± 0.004 µg EAG/mg MF, O-glycoside et catéchine. La teneur des
20.16±0.0002µg EQ/g de MF et 2.59±2.47 10- flavonoïdes obtenue dans notre étude
5
 µg EAT/g de MF, respectivement. Plusieurs (20.16±0.0002µg EQ/g de MF) est inférieure à
études ont montré la richesse d’ail triquètre en celle rapporté par Menaceret al., (2017) qui ont
composés phénoliques (Corea et al., 2003 ; trouvé un taux de 22.12 ± 0.33 mg EQ /MS.Par
Maccelli et al., 2020). En comparant les contre Notre résultats est proche de Himed
résultats obtenus avec d’autres travaux qui ont (2015) qui a montré que la teneur en
été réalisés dans ce contexte, on trouve que le flavonoïdes varie entre 19µg EQ/g MS pour
taux des polyphénols totaux (35.69± 0.004 µg l’extraction par macération et 12 µg EQ/g MS
EAG/g de Mf obtenu dans notre étude est pour des échantillons obtenus par une
inférieur à ce rapporté par Menacer et al. extraction microonde. Cependant le taux en
(2017) qui ont exprimé les résultats par rapport tanins obtenu dans notre étude est relativement
l’ail triquètre sec et qui ont trouvé une teneur proche à ce obtenu par Himed (2015) qui a
de 14.31 ± 0.36 mg EAG/g MS). De même, trouvé que l’extraction par micro-onde
Himed (2015) a testé l’effet de deux modes préserve mieux les tanins par rapport à
d’extraction (extraction par microonde et par l’extraction par macération. Les taux
macération) sur la teneur en polyphénols enregistrés dans cette étude sont de l’ordre de
totaux des feuilles et des bulbes d’ail triquètre, 32 µg EAT/g PS (pour l’extraction par
elle a trouvé que les teneurs en polyphénols microonde) et 22 µg EAT/g PS (pour
sont de 10,049 et 9,810 mg EAG/g PS pour l’extraction par macération). Cette différence
l’extraction par microonde et par macération, entre nos résultats et ceux obtenus par les
respectivement. Tandis que Benchennaf et autres chercheurs est peut-être dû au temps,
Babouche (2018). que ont signalé que la teneur aux saisons de la récolte, aux conditions
en polyphénols totaux est de 338.85±2.771mg climatiques, conditions d’extraction et du
EAG/100g MS pour les bulbes et 1645±34.77 dosage lui-même qui pourraient jouer un rôle
mg EAG/100g les feuilles d’ail triquètre. Les critique sur la composition et les
flavonoïdes sont des métabolites secondaires caractéristiques structurelles des principaux
principaux d’ail triquètre. Selon Corea et al. composés bioactifs d’ail triquètre (Rodríguez-
(2003), la fraction flavonoïdique d’ail triquètre González et al., 2012 ; Ray et Aswatha, 2013).
comporte des C-glycosylflavones, des Selon Rawel et al. (2005), les méthodes de
aglycone flavonique et des kaempferol conservation, de séchage et la lumière peuvent
glycosides. Selon Maccceli et al. (2020), la affecter la teneur en flavonoïdes.
quantification des composés phénoliques par

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Effet de la digestion gastro-intestinale sur trois phases de digestion sur les teneurs en
les composés phénoliques d’ail triquètre polyphénols totaux d’ail triquètre sont illustrés
Effet de la digestion gastro-intestinale sur la dans la Fig. 2.
teneur en polyphénols totaux : Les effets des

 Phase intestinale c

 Phase gastrique a

 Phase orale b

 Extrait d

 0 5 10 15 20 25 30 35 40
 Teneurs en polyphénols totaux (µg EAG/ g de matière fraiche)

Fig.2 : Effet de la digestion in vitro sur les teneurs en polyphénols totaux d’ail triquètre
Les lettres a, b, c et d indiquent une différence significative entre les teneurs en polyphénols de la
plante non digérée et digérée au seuil de signification de 0,05

L’analyse de la variance a montré l’existence 12.67±0.0004 µg EAG/g de matière fraîche ;
d’une différence significative (P

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 Phase intestinale c

 Phase gastrique a

 Phase orale b

 Extrait d

 0 5 10 15 20 25
 Teneur en flavonoides (µg EQ/ g de matière fraiche)

Fig.3.Effet de la digestion in vitro sur les teneurs en flavonoïdes d’ail triquètre. Les lettres a, b, c
et d indiquent une différence significative entre les teneurs en polyphénols de la plante non
digérée et digérée au seuil de signification de 0,05

Une différence significative (p

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l’activité antioxydante d’ail triquètre Allium triquetrum L.

Il existe une différence significative (p

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l’activité antioxydante d’ail triquètre Allium triquetrum L.

phase intestinale, l’augmentation de la teneur hydroxyphényl valériques et des dérivés de
en polyphénols par rapport à la phase gastrique valerolactone correspondants(Aura,2008).Les
est attribuée à la bioconversion métabolique anthocyanes produisent des acides benzoïques,
(méthylation, sulfatation et glucuronidation) des benzaldéhydes hydroxylés et des
des formes natives présentes dans les aliments acétaldéhydes(Alminger et al., 2014 ;
liés à la matrice végétale et stables aux Wojtunik-Kulesza et al., 2020).La diminution
conditions de digestion gastriques (Alminger de la teneur des tanins au cours de la phase
et al., 2014 ; Jakobek et Matic,2018) ce qui intestinale est due à l’hydrolyse de ces
augmente leur teneur par rapport à la phase composés. Des études ont montré que les
précédente (gastrique) mais elle reste toujours polyphénols sont très sensibles aux conditions
faible par rapport à la plante non digérée. Le alcalines légères dans l’intestin grêle, où la
métabolisme colique des composés plupart des polyphénols alimentaires sont
phénoliques commence par l’apparition dégradés ou transformés en d’autres composés
transitoire des aglycones et la formation (Wojtunik-Kulesza et al., 2020).
subséquente de composés aromatiques Effet de la digestion gastro-intestinale in
hydroxylés et d’acides phénoliques. Les vitro sur l’activité antioxydante d’ail
flavones, les flavanones, les flavanols et les triquètre
acides phénoliques se partagent les métabolites Détermination d’IC50 : Pour évaluer l’effet
de l’acide hydroxyphénylpropionique tandis de la digestion gastro-intestinale in vitro sur le
que les flavonols (quercétine, myricetine) et les potentiel antioxydant d’ail triquètre, deux
dimères d’acide férulique se partagent les méthodes ont été utilisées (DPPH, ABTS).Les
métabolites de l’acide phénylacétique valeurs obtenues d’IC50 pour (DPPH et
hydroxylé(Aura et al., 2002).De plus, les ABTS) sont montrés dans le tableau 2
flavanols produisent également des acides

Tableau 2 : Valeurs d’IC50
 IC50 DPPH (mg/ml) IC50 ABTS (mg/ml)
 Extrait 0,182± 0,001c 0,107±0,0003a
 Phase salivaire 0,111± 8,629 10-5b 0,285±0,005c
 Phase gastrique 0,106±0,0001a 0,108±0,0001a
 Phase intestinale 0,111± 7,244 10-5b 0,134±0,004b
*Les lettres a, b et c indiquent une différence significative entre les IC50 (mg/ml) d’ail triquètre non digéré et digéré
au seuil de signification de 0,05

Les deux méthodes d’évaluation d’activité salivaire et intestinale .Dans la phase gastrique,
antioxydante DPPH, ABTS ont montré que l’activité antioxydante est la plus élevée avec
l’ail triquètre présente une forte activité une valeur d’IC50 la plus faible
antioxydante. Pour la méthode DPPH, une (0,106±0,0001mg/ml) suivie par celle de la
différence significative (p0.05) entre
différence significative (p>0.05) entre la phase la plante non digérée et la phase gastrique. Les

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extraits qui semblent présenter les meilleurs en première position puis vient la phase
activités antioxydantes sont ceux de d’ail intestinale (0,134±0,004 mg/ml) et en dernière
triquètre avant digestion et la phase gastrique position la phase orale avec (0,285±0,005
(0,107±0,0003mg/ml et 0,108±0,0001mg/ml), mg/ml).

DISCUSSION
L’ail triquètre présente une forte activité plupart des composés phénoliques restent
antioxydante qui a été rapportée par plusieurs stables pendant la digestion gastrique. Gayoso
auteurs (Himed, 2015 ; Menaceret al., 2017). et al. (2016) ont évalué la bioaccessibilité de
Cette activité est peut être liée aux polyphénols certains composés phénoliques en milieu
et notamment aux flavonoïdes De nombreuses gastrique en utilisant d'étalons : la rutine et
études ont révélé le capacité élevée des l'acide caféique et l’acide rosmarinique.
polyphénols de piégeage des radicaux libres Aucune différence notable n'a été observée
(Kumamoto et al., 2001 ; Khokhar et Owusu entre la quantité initiale soumise à la digestion
Apenten, 2003).Pour la phase salivaire, une gastrique et les quantités récupérées, ce qui
augmentation de l’activité antioxydante a été montre que la digestion gastrique n’a guère
obtenue pour la méthode DPPH par contre, une altéré la stabilité des trois composés
diminution a été enregistrée pour la méthode phénoliques étudiés. Ce résultat est peut être
ABTS. Cela est peut-être du à la nature du aussi expliqué par l’effet de pH du milieu
milieu réactionnel. Le test DPPH est digestif. Plusieurs travaux ont montré qu’un
réactionnel dans un milieu constitué de pH acide peut augmenter l’activité
solvants organiques, tandis que le test ABTS antioxydante (Wojtunik-Kulesza et al., 2020).
est réalisé dans des conditions aqueuses. En Pour la phase intestinale, la diminution de
outre, la solubilité des flavonoïdes dans les l’activité antioxydante, par rapport à la phase
deux milieux doit être prise en compte. gastrique pourrait être liée aux changements de
Certains composés bioactifs susceptibles de ne pH pendant la digestion (Velderrain-
pas être solubles dans les milieux réactionnels Rodríguez et al. ,2016). Elle peut être attribuée
ne peuvent pas effectuer des activités aux pertes des composés phénoliques qui
d'élimination des radicaux (Floegel et al. présentent une forte activité antioxydante
,2011).Il à été constaté que, malgré la pendant cette phase de digestion et qui est due
diminution des polyphénols, flavonoïdes et à leur sensibilité au pH alcalin (Podsȩdek et al.,
tanins on remarque une augmentation du 2014). L’augmentation de l’activité
pouvoir antioxydant durant la phase gastrique antioxydante de la phase intestinale par rapport
de digestion pour les deux méthodes. Cela est à la phase salivaire pour la méthode DPPH et
du à la nature chimique des composés l’égalité des IC50 observée de ces deux phases
engendrés par la digestion gastrique, il existe pour la méthode ABTS est peut être liée à la
des composés phénoliques qui exercent une destruction de la liaison entre O et H en milieu
forte activité même en faibles quantités .Selon alcalin, ce qui l'augmente de la capacité anti
Hayes et al. (2011), l’activité antioxydante radicalaire par l’augmentation du potentiel de
dépend la structure des polyphénols don des éléctrons (Velderrain-Rodríguez et al.
généralement du nombre et de la position des ,2016 ; Siluana et al., 2017). Les résultats
groupements hydroxyles par rapport aux obtenus dans notre étude est en concordance
groupements carboxyles fonctionnels. Parmi avec ceux obtenus par Bhat et Patel (2013) et
les composés phénoliques, les flavonoïdes sont Zudaire et al. (2017) qui ont obtenu aussi une
des composés qui présentent une activité augmentation de l’activité antioxydante après
antioxydante élevée (Montoro et al., 2006). La

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la digestion gastro-intestinale des espèces
Allium sativum et Allium cepa, respectivement.

CONCLUSION
L’ail triquètre possède une gamme de produits rapport à la plante non digérée a été constaté
chimiques bioactifs y compris les composés .Tandis que la méthode ABTS a montré des
phénoliques qui possèdent une forte activité effets différents selon la phase de digestion ; le
antioxydante. Les études expérimentales sur milieu salivaire a provoqué une diminution de
des modèles animaux ou les essais cliniques l’activité suivie de son augmentation durant la
chez l’homme demeurent les meilleures phase gastrique pour qu’elle atteint une valeur
méthodes pour déterminer l’effet de la relativement proche de celle de la plante non
digestion sur les composants des aliments. digérée puis on note un abaissement de cette
Cependant, ces approches sont éthiquement et activité durant la phase intestinale. La phase
techniquement difficiles à mettre en place, très gastrique a révélé la meilleure activité
couteuses et difficiles à tester sur un grand antioxydante pour les deux méthodes de
effectif. Il convient alors de recourir à des détermination du pouvoir antioxydant. Ces
méthodes alternatives comme les systèmes de résultats pourraient servir comme donnés
digestion in vitro. C'est dans ce cadre que préliminaires à des analyses futures
s'inscrit notre étude. Ce travail a pour but concernant l'amélioration de la bioaccessibilit
l’estimation de l’effet de la digestion in vitro é des ingrédients bioactifs dans le corps
sur la teneur en composés phénoliques et sur humains. De plus, la disponibilité facile de la
l’activité antioxydante des parties comestibles matière première encourage en particulier les
(feuilles et bulbes) d’ail triquètre (Allium études futures et la recherche de nouvelles
triquetrum). Les résultats obtenus ont montré possibilités d'utilisation des extraits d’ail
que la transition dans le milieu gastro- triquètre en médecine, ou comme complément
intestinal provoque une diminution de toutes alimentaire en particulier à une époque
les classes de polyphénols analysées caractérisée par une recherche intensifiée de
(polyphénols totaux, flavonoïdes et tanins). nouveaux produits pharmaceutiques et
Cependant, pour la méthode DPPH, une alimentaires naturels.
augmentation de l’activité antioxydante par

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