MISE À JOUR SUR LA DERMATOPHYTIE CANINE ET FÉLINE - Nadia Pagé, DMV, MSc, Dipl. ACVD - Centre vétérinaire ...

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MISE À JOUR SUR LA DERMATOPHYTIE CANINE ET FÉLINE - Nadia Pagé, DMV, MSc, Dipl. ACVD - Centre vétérinaire ...
MISE À JOUR SUR LA DERMATOPHYTIE
         CANINE ET FÉLINE
       Nadia Pagé, DMV, MSc, Dipl. ACVD
                 Février 2018
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PLAN DE LA PRÉSENTATION

    Généralités
    Étiologie, physiopathologie
    Signes cliniques
    Diagnostic
    Traitement : topique, systémique
    Décontamination de l’environnement
    Zoonose
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WEB: RÉFÉRENCES GRATUITES
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GÉNÉRALITÉS
La maladie cutanée contagieuse la plus fréquente
chez le chat
Microsporum canis, M. gypseum, Trichophyton
mentagrophytes
Maladie auto-limitante chez la plupart des animaux
en santé (28-100 jours)

Traitement recommandé:
• Raccourcir le cours de la maladie
• Éviter la contagion aux autres animaux et aux humains
• Éviter la contamination de l’environnement
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GÉNÉRALITÉS
 Plus de 30 espèces de dermatophytes

 Zoophiles        Géophiles           Anthropophiles

                         moziru.com
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PRÉVALENCE

Difficile à estimer. Maladie qui n’est pas à déclaration obligatoire, qui n’est
pas fatale. Sévérité variable et résolution spontanée possible.
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PRÉVALENCE

Études sur la flore cutanée normale du chat et du chien
M. canis n’en fait pas partie

Saprophytes plus fréquemment trouvées chez le chat :
Aspergillus, Alternaria, Penicillium, Cladosporium spp.

Saprophytes plus fréquemment trouvées chez le chien :
Alternaria et Cladosporium
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PATHOGÉNIE
                     Quantité de matériel
                    infectieux; fréquence
                        de l’exposition

        Perte d’intégrité de
                                 État de santé général
        la barrière cutanée

                    Stress physiologique
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RÉSUMÉ FACTEURS DE RISQUE
Selon le consensus du groupe d’experts de la WAVD
 (Vet dermatol 2017)

 Âge (chatons, chiots)
 Habitudes de vie; animaux qui ont accès
 à l’extérieur
 Climat chaud

                                           pinterest.com
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RÉSUMÉ FACTEURS DE RISQUE
    Maladie débilitante; immunosuppression
Le statut positif FIV et/ou FeLV à lui seul n’augmenterait pas le risque

    Stress environnemental ou physiologique
    Traitement immunosuppresseur
    Facteurs limitant le toilettage félin
    Microtraumas cutanés
    Races: chats Persans et Himalayens,
    chats Rex, Yorkshire terriers,
    Jack Russel terriers; chiens de chasse et
    de travail (contact avec sol contaminé)
                                                          pinterest.com
TRANSMISSION
 Suite au contact animal-animal; animal-humain;
 ou avec le sol (infection géophile)
 Suite au contact avec objets ou environnement
 contaminé, mais cette voie serait peu fréquente

 Matériel infectieux peut survivre
 longtemps dans l’environnement
Duek et coll.; Journal of infection 2004

INFECTION
  3 stades
• Adhérence des arthroconidies
  aux cornéocytes (2-6h)
• Germination fongique
• Invasion des structures kératinisées
  Lésions cliniques en 1-3 semaines

 Contagion possible avant même
 l’apparition des lésions
DIAGNOSTIC
   Examen
 • Bon éclairage
 • Palpation de la peau                                                                   taildom.com

 • Ne pas oublier: museau, lèvres, paupières, doigts,
   pavillons des oreilles, aspects médiaux des membres,
   aisselles et queue

Attention!
L’examen seul n’est pas suffisant.
Porteurs asymptomatiques possibles
                                          Small Animal Dermatology A Color Atlas and Therapeutic Guide
SIGNES CLINIQUES GÉNÉRALITÉS

  Envahissement de
  structures kératinisées

  Prurit variable

  Lésions plus souvent asymétriques

  Présentation clinique variable, le reflet de la réponse
  immunitaire de l’hôte
Dr Alana Canupp; JFMS 2014

DIAGNOSTIC
  SIGNES CLINIQUES CHAT
• Présentation variable
• Infection sous-clinique, lésions
  débutantes peuvent être manquées
• Lésions initiales: plus souvent a/n facial,
  des oreilles et du museau, avec
  progression aux extrémités et autres
  régions du corps
DIAGNOSTIC
 SIGNES CLINIQUES CHAT
         Alopécie focale

                +/- squames, croûtes, érythème
DIAGNOSTIC
 SIGNES CLINIQUES CHAT

           Alopécie multifocale
DIAGNOSTIC
  SIGNES CLINIQUES CHAT
• Dermatite miliaire      Vetbook

• Acné
• Squamosis généralisé

                          Vetbook
DIAGNOSTIC
 SIGNES CLINIQUES CHAT
Vetbook

    DIAGNOSTIC
      SIGNES CLINIQUES CHAT
  Mycétome et pseudomycétome
• Infection sous-cutanée; rare
• Persans

    Chien, rare aussi;
    Terriers Yorkshire
      et Manchester

                           Vetbook
DIAGNOSTIC
  SIGNES CLINIQUES CHIEN
• Présentation variable

• Plus souvent la “présentation classique” que chez le chat
   • Zones circulaires alopéciques et squameuses
• +/- érythème, squames, croûtes
• Pustules peu fréquentes
DIAGNOSTIC
 SIGNES CLINIQUES CHIEN

                          Shaw SC UK Vet 2010

                      Furonculose peu fréquente
DIAGNOSTIC
 SIGNES CLINIQUES CHIEN
   Terrier Yorkshire
Pinter L et Stritof Z,VETERINARSKI ARHIV 74, 2004

           DIAGNOSTIC
                  SIGNES CLINIQUES CHIEN

Kérions: peu communs, réaction immunitaire exubérante
Plus souvent: Trichophyton et M. gypseum, mais M. canis aussi possible
Cornegiani L. et coll. Vet dermatol 2009

                                                                                                  Vetbook
DIAGNOSTIC
           SIGNES CLINIQUES CHIEN
         Lésions faciales évoquant une maladie auto-immune

zoetisus.com                        Bond R. :Clinics in Dermatology (2010) 28, 226–236
DIAGNOSTIC
      Lampe de Wood                  M. canis

Lampes avec loupe possiblement plus performantes

Truc : conserver les poils fluorescents pour fins d’enseignement

Truc : choisir les poils fluorescents pour les tests supplémentaires
      (microscopie, culture fongique, PCR)
Ce qui est nécessaire:

• Obscurité
• Temps d’adaptation des yeux
• Pas nécessaire de «laisser chauffer»
  la lampe
Pour éviter les faux + et faux –
• Soulever les croûtes : regarder la base des poils
• Rapprocher la lampe de la peau
• Fluorescence vert pomme
• Poussière et squames : blanc ou bleu-blanc
• Médications et huiles : jaunâtre, orange,…
• Poils de tapis peuvent aussi être
  vert pomme!
DIAGNOSTIC
  MICROSCOPIE DES POILS
• Favoriser l’examen des poils fluorescents
• Poils suspects déposés sur une lame avec de l’huile
  minérale
• Une goutte de bleu de méthylène
  peut être ajoutée

                                      Muller & Kirk’s Small Animal Dermatology 6e ed
DIAGNOSTIC
  CULTURE FONGIQUE
• Favoriser les géloses à grand volume en contenant plat
• En général un DTM (Dermatophyte Test Medium) est
  recommandé (le changement de couleur est utile)

                   Technique
                   de la brosse
                   à dents
Coyner KS; DVM 360 2010

DIAGNOSTIC
  CULTURE FONGIQUE
• “Enfoncer” les soies de la brosse
  à dents sur la gélose
• Incubation à 25-30°C aide à promouvoir la sporulation
• Obscurité non nécessaire
• Examiner les échantillons quotidiennement

    Temps d’incubation:         97.4% des cultures félines
      jusqu’à 21 jours
                            avec M. canis étaient + en 14 jours
                                   (n=13 772 cultures!)
                                 Stuntebeck R. et coll JFMS 2017
• Ruban adhésif transparent!
                                         • Gants

DIAGNOSTIC
  CULTURE FONGIQUE
• Faire l’identification!
    • Ruban adhésif transparent + goutte de bleu de
      méthylène (ou colorant bleu coton au lactophenol,
      ou 3e colorant du Diff quick)
• Pause de 5-10 minutes permet au colorant d’être absorbé
• Colonies suspectes: pâles, blanches, jaunâtres, cannelle,
  le changement de couleur de la gélose survient en
  parallèle de la croissance
                            Les dermatophytes
                            ne sont jamais noirs ou verts!
Rjgalindo from es [GFDL (http://www.gnu.org/copyleft/fdl.html),
                                                   GFDL (http://www.gnu.org/copyleft/fdl.html), CC-BY-SA-3.0
                                                   (http://creativecommons.org/licenses/by-sa/3.0/) or CC BY-SA 2.5-2.0-1.0
                                                    (http://creativecommons.org/licenses/by-sa/2.5-2.0-1.0)],
                                                   via Wikimedia Commons
                                                                                                                                                                                                                  DIAGNOSTIC

Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology 7e ed
                                                                                                                                                                             CULTURE FONGIQUE Microsporum canis
                                                                                                                          Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology 7e ed
DIAGNOSTIC
 CULTURE FONGIQUE Microsporum gypseum
                                                                               Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology 7e ed

        www.hardydiagnostics.com

                                   Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology 7e ed
DIAGNOSTIC
 CULTURE FONGIQUE Trichophyton mentagrophytes
                                                                  Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology 7e ed

                      Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology 7e ed
Penicillium

              DIAGNOSTIC

                   Alternaria                                                                                                                   thunderhouse4-yuri.blogspot.ca

                                                                                            thunderhouse4-yuri.blogspot.ca

                                                        Aspergillus                                                          Cladosporium

www.uoguelph.ca

                                                                                                                                                 mycology.adelaide.edu.au
                                         www.clt.astate.edu

                  fungi.myspecies.info

                                                                                                                              thunderhouse4-yuri.blogspot.ca
                                                              MicrobesZoo – Wordpress.com
DIAGNOSTIC
  PCR
• L’ADN du dermatophyte peut être amplifié
  et identifié au PCR
• Un résultat positif n’est pas toujours = à une infection
  active (porteur)
• Des dermatophytes non viables peuvent
  être retrouvés avec cette technique
DIAGNOSTIC
 PCR

Dans une étude, le PCR (M. canis) avait une sensibilité de
100% et une spécificité de 88,5%. Jacobson LS et coll. JFMS 2017

Dans autre étude, le PCR Microsporum spp. était positif dans 97.8%
des chats infectés (45/46);
Chats guéris (2 cultures négatives) correctement identifiés
• PCR Microsporum spp. était négatif dans 65.2% des cas
• PCR M. canis était négatif dans 84.8% des cas
Moriello KA et Leutenegger CM, Vet Dermatol 2017
Chat

DIAGNOSTIC
  Dermoscopie                        Dong C. et coll. Vet Dermatol 2016

• Méthode non invasive : illumination
  et magnification de la peau à
  l’aide d’une caméra
                  Humain

                                                                          Dong C. et coll. Vet Dermatol 2016

                         Dong C. et coll. Vet Dermatol 2016
DIAGNOSTIC
  Biopsie
• Changements histopathologiques divers
• Colorations spéciales
   • PAS ou Periodic acid-Schiff
   • GMS ou Grocott methenamine silver

 Nodules
 Lésions chroniques faciales
 avec suspicion de pemphigus canin

 Investigations de lésions
 inhabituelles canines et félines
                                         Bond R. :Clinics in Dermatology (2010) 28, 226–236
TRAITEMENT
« Treatment duration needs to be as long
                                                    Minimum de 2
   as needed but as short as possible. »            cultures négatives
  Karen Moriello; JFMS 2014

                                      « Negative PCR in a treated
                                      cat is compatible with cure.
                                      Negative fungal culture
                                      from a cat with no lesions
                                      and a negative Wood’s lamp
                                      (except for glowing tips)
                                      is compatible with cure.»
                                      Consensus de la WAVD, Vet Dermatol 2017
pinterest.com

     TONTE OU PAS?
       Pas d’étude qui y a répondu
       spécifiquement
                    Avantages
                    • Élimination du matériel infectieux
                    • Facilitation du tx topique
                      (poils longs)

                                                       Rasage des
Inconvénients                                       zones lésionnelles?
• Stress, possible sédation
• Possibles micro-traumas cutanés
• Possible propagation des lésions
TRAITEMENT
      Isolement
    • Facilite la décontamination environnementale, diminue
      les risques de contagion aux H et autres animaux
    • Inconvénients
      • Jeunes infectés au moment de la socialisation
      • Vieux: possiblement autres problèmes de santé
         qui peut nécessiter une surveillance étroite

 «Dermatophytosis is a curable disease, but behavior problems
and socialization problems can be life-long if the young or newly
         adopted animals are not socialized properly.»
                    Consensus de la WAVD. Vet Dermatol 2017
TRAITEMENT
        TOPIQUE
    •   Toujours recommandé

                                                      Bored Panda

•   OBJECTIFS
•   Tuer les spores sur les tiges pilaires
•   Limiter : contagion, contamination environnementale
•   Combiné au tx systémique, peut accélérer la guérison
•   Application sur tout le pelage
TRAITEMENT
        TOPIQUE
    •   Toujours recommandé

                                                   Bored Panda

Tx de choix Tx de choix recommandé du consensus
de la WAVD (Vet dermatol 2017)
Applications 2 fois par semaine :
 • Énilconazole
 • Bouillie soufrée
 • Shampooing miconazole-chlorhexidine (pas au Canada)
TRAITEMENT
  TOPIQUE
• Énilconazole (Imaverol®)
• Émulsion 0.2%
• Non homologué chez le chat
TRAITEMENT
  TOPIQUE
• Bouillie soufrée
• ~ 2-5%
• Effets secondaires rapportés: assèchement coussinets,
  perte poils (oreilles), poil sec, coloration jaune
• Attention de prévenir les proprios de l’odeur
  et du fait que le produit peut tacher!
TRAITEMENT
     TOPIQUE (tx prometteurs, mais besoin de plus d’études)

Evaluation of therapeutic efficacy of medical shampoo containing terbinafine
hydrochloride and chlorhexidine in dogs with dermatophytosis
complicatd with bacterial infection. Nam H-S et coll. J Biomed Res 2013; 14: 154-159
TRAITEMENT
           SYSTÉMIQUE
Tx de choix recommandé
du consensus de la WAVD
(Vet dermatol 2017)

L’itraconazole et la terbinafine sont les
médicaments les plus efficaces et sécuritaires
pour le traitement de la dermatophytie
TRAITEMENT                          L’utilisation de préparations
                                    pharmaceutiques magistrales
    SYSTÉMIQUE                      n’est pas recommandée.
• Itraconazole
•   Itrafungol® approuvé chez le chat à 5 mg/kg PO aux 24h
    une semaine sur deux pour 3 cycles; réf. à 5 à 10 mg/kg/jour
• Refuges félins: protocole de Tx aux 24h pour 21-28 jours combiné
  au Tx topique. Ensuite le topique est continué 2 fois par semaine
  jusqu’à guérison (Moriello; Clinical Veterinary Advisor 2015)
• Chien 5-10 mg/kg aux 24h
• Sporanox® (formulation humaine)
TRAITEMENT
  SYSTÉMIQUE
• Terbinafine
• Lamisil® (formulation humaine)
• 30-40 mg/kg PO aux 24h
• Peut aussi être donné en tx pulsé une semaine sur deux ou pour
  21-28 jours dans les refuges félins
TRAITEMENT
  SYSTÉMIQUE
• Kétoconazole (formulation humaine)
• 5-10 mg/kg PO aux 24h avec nourriture
• Non recommandé chez le chat: hépatotoxicose
• Possiblement moins efficace contre M. canis

• Fluconazole (Diflucan®; formulation humaine)
• 5-10 mg/kg PO aux 24h avec nourriture
• Possiblement moins efficace
• Rarement hépatotoxique
TRAITEMENT
  SYSTÉMIQUE
• Griséofulvine
• Disponible dans certains pays
• Myélosuppression possible chez le chat, particulièrement si FIV
  ou FeLV +; suivis hématologiques à prévoir
• Dose selon la formulation
   • Microsize (Fulvicin U/F): 25 mg/kg PO q 12-24h à 50mg/kg q 24h
     (chat); 25 mg/kg BID ou 50 mg/kg q 24h (chien) (avec repas riche
     en gras)
   • Utramicrosize dans PEG 5-10 mg/kg q 24h (chat); 10 mg/kg q 24h
     (chien)
themetapicture.com

TRAITEMENT
 TX DE L’ENVIRONNEMENT

   «… if it can we washed,
it can be decontaminated »
Consensus de la WAVD. Vet dermatol 2017

    Rassurer le proprio: le matériel infectieux
    ne va pas proliférer dans l’environnement
    comme des moisissures!
TRAITEMENT
    TX DE L’ENVIRONNEMENT
 • Objectifs :
 • Enlever le matériel infectieux de l’environnement
 • Éviter d’occasionner des résultats faux +
   aux échantillons de contrôle (porteurs d’éléments
   fongiques sur le pelage)
 • Pour éviter la contagion, quoique la voie d’infection
   la plus fréquente semble être le contact
   avec un individu infecté
Fréquence recommandée : 2 fois par semaine (désinfection)
• Enlever tous les jours le pelage de l’endroit où est gardé l’animal
TRAITEMENT
  TX DE L’ENVIRONNEMENT

  La portion la plus importante de la désinfection:
  enlever les débris et laver avec un détergent
• Époussetage avec des lingettes électrostatiques
• Aspirateur (jeter sac après; porter des gants)
• Laveuse pour les articles lavables à la machine
TRAITEMENT
  TX DE L’ENVIRONNEMENT
• Lavage de la surface puis rinçage
• Lorsque les “gros débris” sont enlevés: désinfectants
  efficaces contre T. mentagrophytes
• Eau de javel diluée 1:10 à 1:100
  • Solutions fraîches (refaire au minimum 1/sem.)
  • Contenant opaque
• Énilconazole
• Produits avec peroxyde d’hydrogène accéléré
TRAITEMENT
  TX DE L’ENVIRONNEMENT
• Tissus
• Lavage à l’eau froide ou chaude
• Eau de Javel optionnelle
• Ne pas surcharger la laveuse
• Cycle le plus long (peut même X 2)
TRAITEMENT
  TX DE L’ENVIRONNEMENT
• Tapis
• Aspirateur pour enlever les débris/poils infectieux
• Laver ou considérer jeter les petits tapis
• Shampouineuse à tapis + détergent (2X) ou avec machine
   à extraction par eau chaude
• Si très contaminé, pré-traitement avec désinfectant
  (peut décolorer les tapis)
TRAITEMENT
  TX DE L’ENVIRONNEMENT
• Meubles en tissu
• Nettoyage à la vapeur ou décontamination
  tel que décrit pour les tapis

• Système de chauffage et conduites d’air
• Théoriquement pas nécessaire de nettoyer
• Spores sont retenus par les filtres
  (à remplacer régulièrement)
Temps de contact
de 10 minutes
ZOONOSE
Pathogène prédominant chez l’H:
T. rubrum (onychomycose)
 Possiblement la zoonose la plus
 commune dans le monde
 Sauf pour M. gypseum, dermatophytes
 zoophiles plus souvent
 impliqués: M. canis,
T. verrucosum, T. equinum,
T. mentagrophytes

                            By James Heilman, MD (Own work) [CC BY-SA 3.0
                            (http://creativecommons.org/licenses/by-
                            sa/3.0)]via Wikimedia Commons
ZOONOSE
~ 20-50% des dermatophyties humaines reliées
à une zoonose

Statistiques réelles inconnues
   Dans une étude : maisonnées avec Chat - M. canis
   • Zoonose: 44% adultes et 80% des enfants

   Les plus susceptibles:
   • Enfants < 5 ans
   • Adultes ≥ 65 ans
   • Femmes enceintes
   • Gens immunocompromis
                                                      npr.org
ZOONOSE
Transmission
   Contact: pelage ou lésions cutanées d’un animal affecté
   Contact: squames ou poils dans l’environnement
Transmission d’une infection
anthropophile d’un humain
à un animal est rare
mais possible
? QUESTIONS?
RÉFÉRENCES
• Bagcigil AF et coll. Recovery of dermatophytes in pet grooming tools from veterinary clinics
  and pet grooming salons. J Small Anim Pract 2010; 51: 39-42.
• Bensignor E. et coll. Traitement des dermatophytoses du chien et du chat: proposition de
  référentiel du groupe d’étude en dermatologie des animaux de compagnie (GEDAC).
  Revue vétérinaire clinique 2014; 49: 87-92.
• Cornegliani L, Persico P, Colombo S. Canine nodular dermatophytosis (kerion): 23 cases.
  Vet Dermatol 2009; 20: 185-190.
• Dong C, Angus J. et coll. Evaluation of dermoscopy in the diagnosis of naturally occuring dermatophytosis in cats.
  Vet dermatol 2016; 27: 275-e65.
• Frymus T. et coll. Dermatophytosis in cats ABCD guidelines on prevention and management. JFMS 2013;15, 598-604.
• Hnilica KA et Patterson AP. Small Animal Dermatology, A Color Atlas And Therapeutic Guide,
  Fourth edition, 2017, Elsevier.
• Jacobson LS McIntyre L, Mykusz J. Assessment of real-time PCR cycle threshold values in Microsporum canis
  culture-positive and culture-negative cats in an animal shelter: a field study. JFMS 2017.
• Mawby DI et coll. Bioequivalence of orally administered generic, compounded, and innovator-formulated itraconazole
  in healthy dogs. J Vet Intern Med 2014; 28: 72-77.
•   Miller Jr,WH, Griffin CE, Campbell KL. Muller and Kirk’s Small Animal Dermatology, 7e edition. 2012; Elsevier.
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• Moriello K. Feline dermatophytosis Aspects pertinent to disease management in single
  and multiple cat situations. JFMS 2014;16, 419-431.
• Moriello K. Coyner K, et coll. Diagnosis and treatment of dermatophytosis in dogs and cats.
  Clinical Consensus Guidelines of the World Association of Veterinary Dermatology.
  Vet dermatol 2017; 28: 266-303.
• Moriello KA, Leutenegger CM. Use of a commercial qPCR assay in 52 high risk shelter cats for disease
  identification of dermatophytosis and mycological cure. Vet Dermatol 2018; 29:66-e26.
• Moriello K. Dermatophytosis, 2015. Dans: Clinical Veterinary Advisor Dogs and Cats Third Edition.
  Editor-in-Chief Etienne Côté. Elsevier.
• Moriello KA, Verbrugge MJ, Kesting RA. Effects of temperature variations and light exposure on the time to growth
  of dermatophytes using six different fungal culture media inoculated with laboratory strains and samples obtained
  from infected cats. JFMS 2010; 12: 988-990.
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  peroxide against Microsporum canis and Trichophyton species. JFMS 2017;19:370-374
• Stuntebeck R, Moriello K, Verbrugge M. Evaluation of incubation time for Microsporum canis dermatophyte cultures.
  JFMS 2017: 1-4.
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• Weese JS et Fulford MB: Chap. 4 Fungal diseases. 2010. Dans: Companion Animal Zoonoses.
  Blackwell Publishing Ltd. Published (Copyright © 2011).
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