LE CHEVAL QUI TOUSSE MARIANNEDEPECKER,DMV, PHD, DIPL.ECEIM CONFÉRENCEAVEF JUNIOR,ENVT,JEUDI16 FÉVRIER2017

Le cheval qui tousse
M a r ianne De p e c ker, DM V, P h D, Di p l .ECEIM

Co nfé rence AV E F Ju n i or, E N V T, Je u d i 1 6 Fé vr ier 2 0 1 7

Introduction
Qu’est-ce que la toux?
 Mécanisme réflexe de défense pulmonaire
 Stimulation des récepteurs tussigènes situés dans larynx, carina (agression mécanique), VRP (agression
chimique, irritante)
 Facilite le retrait des substances nocives et des sécrétions excessives par un flux d’air expiratoire
maximal
 4 phases:
   Inspiration profonde
   Fermeture de la glotte et compression thoracique et abdominale
   Expression: ouverture de la glotte et expiration puissante (gradient de pression élevé alvéoles/pharynx)
   Relaxation et bronchodilatation transitoire

Introduction
Principaux facteurs déclencheurs de la toux:

  Bronchoconstriction
  Mucus en quantité excessive
  Particules inhalées
  Médiateurs inflammatoires (infection)
  Pression intra/extramurale (abcès, tumeur, fibrose interstitielle, pleurésie…)
  Air chaud/froid
  Œdème pulmonaire
  Affection virale (augmente sensibilité des récepteurs tussigènes)

Introduction
Effets délétères de la toux (chronique):

  Fatigue excessive si quintes répétées
  Effets néfastes sur la respiration, la prise alimentaire, le système cardiovasculaire (hypotension)
  Hypertrophie musculaire bronchique : risque d’œdème, emphysème pulmonaire

 D’où…une gène importante pour le cheval (et le propriétaire!)

Introduction
Importance de la toux
 Accompagne la majorité des affections respiratoires = motif
TRES fréquent de consultation
 Peut être associée à d’autres signes cliniques: jetage, dyspnée,
fièvre…
Sévérité et fréquence de la toux varie en fonction de la sévérité
de l’affection et du cheval

 On soigne l’affection responsable de la toux… pas la toux!

Affections responsables de toux chez le
cheval

Affections responsables de toux
 Stimulus mécanique ou irritant des récepteurs = très nombreuses causes!!
 Plusieurs approches cliniques pour localisation anatomique
 Dans tous les cas: historique et examen clinique complet et détaillé pour orienter le
diagnostic
 Diagramme décisionnel: toux avec ou sans fièvre

Toux

               Absence de fièvre                                        Fièvre

Atteinte VRP                                                Atteinte VRP
      Asthme léger/modéré/sévère (IAD/RAO)
          +/- surinfection bactérienne                            Pneumonie bactérienne
                                                                  Pneumonie virale
      HPIE
                                                                  Pneumonie fongique
      Pneumonie parasitaire (Dictyocaulus)
                                                                  Pneumonie abcédative
      Œdème pulmonaire (insuffisance cardiaque)
                                                                  Pneumonie interstitielle
Atteinte VRS
      Atteinte nasopharynx: pharyngite, DDVP, kyste sous-         Pleuropneumonie
      épiglottique, fente palatine, paralysie pharyngée

      Mycose/empyème PG                                           Tumeur thoracique

      Collapsus trachéal, corps étranger
      (Sinusite)                                            Infection VRS

Approche clinique du cheval présentant
de la toux

Approche clinique
Commémoratifs
 Age, date d’acquisition, activité
 Environnement (pré/box, litière, alimentation)
 Vaccination, vermifugaton
Anamnèse
 Date d’apparition des signes (temps, période)
 Autres signes associés
 Moment de la toux: repos, travail (début/fin), repas

Approche clinique
Examen clinique
 Aspect général du cheval (hypertrophie sangle
abdominale? Amaigrissement?)
 Examen cardiovasculaire
 Courbe et fréquence respiratoire (ligne de pousse?)
 Présence de jetage (uni/bilatéral, aspect)
 Hypertrophie NL, déformation tête
 Toux (spontanée, déclenchée: palpation larynx, test
sac)
 Fièvre?

Approche clinique
Auscultation thoracique
 Crépitements, sifflements:
  Inspiratoires (infection, œdème)
  Expiratoires (inflammation)
  Caudo-dorsaux (HPIE)
  Zone auscultation augmentée (RAO)
 Matité, bruits liquidiens (pneumonie interstitielle, pleuropneumonie)
Percussion thoracique

                                       Permet de différencier affection VRP / VRS

Approche clinique
Quels examens complémentaires?
 Endoscopie
 Echographie thoracique
 Radiographies thoraciques

 Prélèvements:
  Ecouvillon nasal/NP
  Prélèvement poches gutturales
  Lavage trachéal
  Lavage bronchoalvéolaire
  Thoracocentèse
  Biopsie pulmonaire

Examens complémentaires lors de toux

Endoscopie

Endoscopie
 Permet l’évaluation complète des cavités nasales, du pharynx, du larynx, de la trachée et des
poches gutturales
 Permet de détecter une affection sinusale dans certains cas
 Permet de détecter une affection des VRP dans certains cas

 Permet de réaliser des prélèvements respiratoires

 Outil très utile pour l’évaluation des voies respiratoires en cas de toux

Affections du larynx

Anatomie:
◦ Cartilages aryténoïdes, entourant la rima glotidis qui délimite
  l’entrée de la trachée,
◦ Cordes vocales
◦ Ventricules
◦ Replis ary-épiglottiques
◦ Épiglotte

Affections des aryténoïdes
Chondrite des aryténoides

Hémiplégie laryngée:
◦ Défaut d’abduction du cartilage aryténoïde, généralement le
  gauche
◦ Classifiée selon son degré de sévérité
◦ Peut être artéfactuelle ou aggravée si cheval tranquilisé
◦ Grades sévères prédisposent au collapsus laryngé, et donc à
  une intolérance à l’exercice
◦ Toux peu fréquente mais possible

Système de classification de la fonction laryngée

Affections de l’épiglotte
• Située sur le voile du palais lorsque le cheval ne déglutit
  pas.
• Entrappement de l’épiglotte: apex, bords latéraux et
  surface dorsale de l’épiglotte recouverts par tissu sous-
  épiglottique. Forme de l’épiglotte identifiable mais
  vascularisation dorsale et bords dentelés non visibles.

• Kyste sous-épiglottique

• Anomalie morphologique (hypoplasie).

• Le diagnostic peut être confirmé par un examen
  radiographique.

Affections du pharynx
Pharyngite:
◦ Jeunes chevaux (plus sévère à 2 ans).
◦ Souvent asymptomatique: réponse normale du
  tissu lymphoïde pharyngé aux allergènes
  environnementaux, aux particules irritantes, ou
  aux agents bactériens et viraux inhalés.
◦ Pharyngites sévères: toux +/- obstruction
  dynamique des VRS (collapsus pharyngé,
  déplacement dorsal du voile du palais, collapsus
  des replis ary-épiglottiques).

Système de classification des
folliculites pharyngées

Affections du voile du palais
•   Voile du palais = plancher du nasopharynx = palais mou,
    dont la partie caudale libre (voile du palais) repose en
    temps normal sous l’épiglotte.

•   Anomalies congénitales: fente palatine ou longueur
    insuffisante, typiquement accompagnées de dysphagie
    (jetage alimentaire) + toux pendant les repas

•   Déplacement dorsal du voile du palais (DDVP): passage
    de la partie caudale libre du palais mou dorsalement à
    l’épiglotte, recouvrant complètement celle-ci. Toux
    possible au repos ou à l’effort

•   A noter: après la toux, le cheval déplace son voile du
    palais!!

Affections du pharynx
Paralysie pharyngée:
◦ Origine nerveuse: mycose des poches
  gutturales, traumatisme cervical/cranien,
  botulisme, empoisonnement
◦ Parois affaissées, voile du palais déplacé
  dorsalement, importante quantité de salive et
  de débris alimentaires dans le naso-pharynx
◦ Signe associé: dysphagie

Affections du pharynx

 Autres anomalies: corps étranger, compression par un
  ganglion retro-pharyngé hypertrophié lors de gourme
  (détresse respiratoire), masse tumorale

Affections des poches gutturales

Diverticules des trompes d’Eustache,
rencontrés chez tous les animaux de l’ordre des
périssodactyles (tapirs, rhinocéros, et équidés).

Contiennent des structures vasculaires,
nerveuses, ou osseuses

Passage de l’endoscope au travers du volet
cartilagineux grâce à un guide métallique (canal
opérateur).

Affections des poches gutturales
Mycoses des poches gutturales (Aspergillus ou
Candida sp):
 ◦ Plaques fongiques accolées à la muqueuse
 ◦ Signes cliniques:
   ◦ Epistaxis (atteinte carotide)
   ◦ Jetage purulent
   ◦ Dysphagie (jetage alimentaire, eau)
   ◦ Autre atteinte nerveuse (vestibulaire, facial,
      syndrome de Horner, paralysie laryngée…)
   ◦ Toux
 ◦ Diagnostic définitif: prélèvement et culture de l’agent
   fongique.
 ◦ L’endoscopie permet également la réalisation de
   traitements locaux

Affections des poches gutturales

Gourme: infection à Streptococcus equi equi Abcédation des
nœuds lymphatiques retro-pharyngés sur le plancher du
compartiment médial: (gourme)

Empyème à Streptococcus equi zooepidemicus

Affections de la trachée et des bronches proximales

Sécrétions trachéales: grade 1 à 5
 ◦ Corrélation positive avec l’inflammation pulmonaire (LBA)

HPIE: visualisation de sang après un effort (30 minutes-2h)

Carina (bifurcation trachéo-bronchique): épaississement
 ◦ Inflammation chronique, souvent associée à de la toux

Premières bronches: mucus, traumatisme, corps étranger

Système de classification des
sécrétions trachéales

Affections des cavités nasales

De part et d’autre du septum nasal
Séparées par les cornets nasaux ventral et dorsal en trois méats.
Volutes de l’ethmoïde: hématome progressif de l’ethmoïde.
Abouchement de l’ostium naso-maxillaire: sinusite.
Cornets nasaux: épaississement associé à une déviation du
septum indicatrice d’une affection sinusale.
Méats ventral, moyen et dorsal: recherche de traumatisme, de
mycose, ou de corps étranger.

Echographie thoracique

Echographie thoracique

Simple et rapide
Lors d’atteinte pulmonaire (surtout infectieuse)
Lésions: queues de comète, liquide pleural, abcès superficiels,
nodules, consolidation pulmonaire, masse médiastinale

Echographie thoracique

Médiastin cranial

Radiographies thoraciques

Radiographies thoraciques
 Nécessitent un générateur puissant (clinique)
 Permettent d’orienter le diagnostic en fonction du pattern observé
 Pas de diagnostic étiologique (sauf rhodo)
 Peu utile dans les cas de toux secondaires à une inflammation (IAD/RAO)
 Rarement en première intention

Radiographies thoraciques
Vue crânio-dorsale                   Vue caudo-dorsale

               Vue crânio-ventrale
                                         Vue caudo-ventrale

Radiographies thoraciques
Opacification interstitielle
Augmentation de la densité du parenchyme pulmonaire
  ◦ Densification diffuse et étendue- Poumon « gris »
  ◦ Les contours des vaisseaux sont mal définis

Affections pouvant mener à ce type d’opacification :
  ◦   RAO/IAD
  ◦   HPIE
  ◦   Pneumonie interstitielle
  ◦   Œdème/hémorragie pulmonaire

HPIE

N, jument de Selle de 9 ans utilisée en CSO, présentée
pour épistaxis bilatérale après l’effort

Pneumonie interstitielle

Jument SF de 10 ans présentée pour
    coliques et amaigrissement

EC: hyperventilation, fréquence respiratoire de
44 mpm, naseaux dilatés

                    EMPF

Radiographies thoraciques
Opacification bronchique

Epaississement des parois bronchiques
 ◦ Images en « rail de chemin de fer » ou en « anneau »

Affections pouvant mener à ce type d’opacification :
 ◦ Bronchite aigue
 ◦ Broncho-pneumonie
 ◦ RAO

Radiographies thoraciques
Opacification alvéolaire

Absence d’air dans les alvéoles
  ◦ Alvéoles collabées ou remplies d’un matériel d’opacité liquidienne

Densification plus ou moins globale du tissu pulmonaire
  ◦ Mise en évidence du trajet des bronches, radio-transparentes
    ◦ Bronchogramme

Affections pouvant mener à ce type d’opacification :
  ◦ Pneumonie
  ◦ Bronchopneumonie
  ◦ (Œdème/hémorragie pulmonaire)

Rhodococcose:

Opacification de type nodulaire, alvéolaire, et
interstitielle + abcédations

Prélèvements respiratoires

Prélèvements respiratoires
 Permettent d’établir un diagnostic étiologique et d’adapter le traitement
 Localisation du prélèvement en fonction de l’atteinte suspectée (VRS/VRP)
 Cytologie/histologie
 Recherche d’agent infectieux: attention à la représentativité de l’échantillon!
   Culture / PCR bactérienne
   Culture fongique
   Culture / PCR virale

Prélèvements nasal et NP

Prélèvements nasal et NP
 Prélèvement nasal:
  Indication: affection bactérienne pathogène obligatoire (gourme) sinon spécificité

Prélèvement poches gutturales

Prélèvement poches gutturales
 Méthode
  Lavage cathéter (endoscope)
  Ecouvillon/ponction (cathéter)
   voie transcutanée

 Composition normale
  Cytologie: Mucus, cellules épithéliales ciliées cylindriques, PNN,

Lavage trachéal

Lavage trachéal
Indication
 Trouble infectieux des voies respiratoires moyennes ou profondes
    Bronchopneumonie/pleuropneumonie infectieuse
    Pneumonie interstitielle (+ biopsie)
    Affection virale aigue
    Trachéite

Lavage trachéal
Evaluation
 Cytologique: inflammation, saignement, infection virale, fongique, ou bactérienne
 Recherche d’agents pathogènes: prélèvement stérile (≠ LBA)
  Culture bactérienne, fongique
  PCR virale: EHV (1, 4, 2, 5), EIV…
  PCR mycoplasmes

Lavage trachéal
Deux méthodes
 Méthode trans-trachéale
    Poulains
    Endoscope non disponible
    Pas de contamination oro-pharyngée du prélèvement
    Plus invasif- préjudice esthétique, emphysème sous-cutané, cellulite, pneumomediastin

 Méthode trans-endoscopique
  Chevaux adultes et poulains > 6 mois
  Peu invasif mais risque de contamination plus élevé (Pseudomonas: contaminant endoscope!!)

Lavage trachéal- Méthode trans-endoscopique
Matériel
 Endoscope, contention (sédation, tord-nez)
 Cathéter
 NaCl stérile
 Seringue 20 ml, aiguille
 +/- lidocaine (seringue 10 ml)
 Tube sec, EDTA, milieu de Sabouraud (frais)

Lavage trachéal- Méthode trans-endoscopique
Réalisation

Lavage trachéal- Méthode trans-trachéale
Matériel
 Tondeuse, matériel asepsie, gants stériles
 Lidocaine, seringues 2.5ml, aiguilles
 Lame bistouri, compresses stériles
 Cathéter + sonde urinaire chien ou cathéter avec trocard
 NaCl stérile, seringues
 Agrafeuse
 Tubes sec, EDTA, milieu Sabouraud

Lavage trachéal- Méthode trans-trachéale
Réalisation

Lavage trachéal
Interprétation
Examen cytologique:
 Différentiel cellulaire: valeurs normales
     Macrophages 40-80 %, dont hémosidérophages (pas de valeur seuil définie)
     Lymphocytes < 10 %
     Polynucléaires neutrophiles < 20%
     Mastocytes < 1 %
     Eosinophiles < 1 %
 Aspect des neutrophiles: dégénérés ou non
 Cellules épithéliales: présence, aspect- ciliocytophtorie (atteinte virale)
 Présence de bactéries (libres/phagocytées), éléments fongiques, éléments végétaux

Lavage trachéal
Interprétation
 Culture bactérienne
    Toujours comparer le résultat à la cytologie
    Concluant si > 1.103 CFU, bactéries phagocytées, PNN dégénérés et/ou >20%
    Bactéries anaérobies toujours significatives
    Bactéries à pouvoir pathogène incertain: Enterobacter, Bacillus, Acinetobacter, Streptococcus β-
     hémolytiques (sauf St. pneumoniae), Staphylococcus epidermidis
 Culture fongique
    1 mois avant résultat final
    Peu sensible (Sabouraud)
    Germes les plus fréquents: Aspergillus sp, Penicillium
    Pas de corrélation avec cytologie

Lavage trachéal
Interprétation
 PCR virales
  EHV2 associé à toux, contre performance
  EHV5 fréquent

Chez 8% chevaux sains:
  Culture positive pour Klebsiella, Streptococcus β-hémolytique, Pasteurella, Pseudomonas
   aeruginosa
  Champignons libres ou phagocytés

Lavage trachéal
Inflammation aseptique
◦ Neutrophiles +/- dégénérés (anciens)
◦ Macrophages

Lavage trachéal
                  Neutrophiles dégénérés avec
                  bactéries intracellulaires en
                  bâtonnets

                  Toutes les bactéries
                  apparaissent bleues
                  (coloration de Wright)- ne pas
                  confondre avec débris-
                  rechercher bâtonnets ou
                  coques par paires

Lavage trachéal
Infection bactérienne
 ◦ Neutrophiles dégénérés ++
 ◦ Bactéries libres et phagocytées (coques,
   bacilles)

Culture / PCR ++

                                                                                  Strep. Zooepidemicus

          Rhodococcus equi
                                              Strep. Zooepidemicus + Actinobacillus suis

Lavage trachéal
Infection à Dictyocaulus arnfieldi
 ◦ Éosinophiles
 ◦ Macrophages

Lavage bronchoalvéolaire (LBA)

Lavage bronchoalvéolaire (LBA)
Indication
 Troubles respiratoires chroniques: toux, dyspnée, jetage
 Intolérance à l’exercice
 Epistaxis
 Affection respiratoire aigue / crise « pousse » (tolérance!)

Lavage bronchoalvéolaire (LBA)
Deux méthodes
 A l’aveugle
  Sonde de lavage bronchoalvéolaire
  Méthode la plus utilisée
  Prélèvement dans poumon droit dans > 90% cas

 Sous contrôle vidéo-endoscopique
  Endoscope de longueur minimale
  Permet de prélever les 2 poumons

LBA- Méthode à l’aveugle
Matériel
 Sonde LBA
 NaCl isotonique 250 ml
 4 seringues de 50 ml
 Lidocaine, seringue de 20 ml
 Pot pour mélange
 Tubes EDTA

LBA- Méthode à l’aveugle
Réalisation
 Passage de la sonde par voie nasale, jusque dans la trachée (tête en extension)
   Aucune résistance, anneaux trachéaux, toux
 Instillation de lidocaine
 Avancée dans les bronches jusqu’à la sensation de blocage
   Ne pas forcer
 Instillation de 250 (ou 500) ml de NaCl en 2 bolus, aspiration entre chaque bolus
   Jeter les premiers 15-20 ml qui correspondent au contenu du liquide dans la sonde, qui
    n’a pas atteint le poumon
   Liquide aspiré doit être mousseux: protéines du surfactant
 Mélange des seringues dans un pot et envoi d’un échantillon du mélange dans
tube EDTA (si possible sous couvert du froid)

LBA- Méthode à l’aveugle

LBA- Méthode endoscopique
Réalisation
 Passage de l’endoscope jusque dans la trachée
 Instillation de lidocaine par le canal opérateur
 Avancée de l’endoscope dans la bronche principale droite ou
gauche puis jusqu’au blocage dans une bronche distale
 Instillation de 250 (ou 500) ml de NaCl en 2 bolus par le canal
opérateur, aspiration entre chaque bolus
Jeter les premiers 20-30 ml qui correspondent au liquide
contenu dans le canal opérateur qui n’a pas atteint le poumon
 Mélange de chaque poumon ou des 2 poumons et envoi/EDTA

Lavage bronchoalvéolaire
Différentiel cellulaire cheval sain:
 ◦ Macrophages alvéolaires: 60-80%
     ◦ Dont érythrophages/ hémosidérophages:

Lavage bronchoalvéolaire
Facteurs de variation
 Poumon prélevé
 Quantité de liquide instillé
 Température du liquide instillé
 Conditions d’envoi
 Population étudiée

                                    Depecker et coll, Vet J 2014

Lavage bronchoalvéolaire
       Utilisation dans le diagnostic de l’asthme équin

                           Asthme léger à modéré (IAD)             Asthme sévère (RAO ou SP-RAO)

Présentation Age          Age jeune à moyen, mais peut être        > 7 ans
clinique     d’apparition observé à n’importe quel âge
             Signes        - Toux occasionnelle, baisse de     - Toux régulière à fréquente, intolérance à l’exercice,
             cliniques       performances, courbe respiratoire   dyspnée au repos
                             normale au repos                  - Signes et sévérité peuvent varier dans le temps,
                           - Signes chroniques (> 4 semaines)    limitant l’activité
             Durée         Amélioration spontanée ou avec          Dure souvent plusieurs semaines/mois avant
             d’évolution   traitement. Faible risque de récidive   diagnostic
             Historique    Environnement: écurie                   Exposition à la poussière ou aux allergènes en écurie
                                                                   ou au pré. Historique familial d’asthme possible.
                                                                   Signes cliniques peuvent être saisonniers

Lavage bronchoalvéolaire
        Utilisation dans le diagnostic de l’asthme équin

                                    Asthme léger à modéré (IAD)           Asthme sévère (RAO ou SP-RAO)

Confirmation Endoscopie des voies   Mucus trachéobronchique augmenté      Mucus trachéobronchique augmenté
du diagnostic respiratoires         (chevaux de course >1 ; chevaux       Exclusion des autres affections
                                    sport/loisir >2 )
                                    Exclusion des autres affections
              Cytologie du LBA      Augmentation légère des               Augmentation modérée à sévère des
                                    neutrophiles (>5-10%), éosinophiles   neutrophiles (>25%)
                                    (>1-5%), et/ou mastocytes (>3-5%)
              Test de fonction      Flux d’air sensiblement limités       Flux d’air modérément à sévèrement limités
              pulmonaire            Hyperréactivité des voies aériennes   lors de crise
                                                                          Réversible avec des bronchodilatateurs ou
                                                                          changement d’environnement
                                                                          Hyperréactivité des voies aériennes

Lavage bronchoalvéolaire
Inflammation aseptique: MIVRP (IAD)
◦ Neutrophiles > 5-10%
◦ +/- mastocytes > 2-5%
◦ +/- éosinophiles > 1-5%

Lavage bronchoalvéolaire
Inflammation aseptique: MOVRP (RAO)
 ◦ Neutrophiles > 25%
 ◦ Mucus, spirales de Curschmann
 ◦ Macrophages multi-nucléés

Lavage bronchoalvéolaire
HPIE
◦ Erythrophages
◦ Hémosidérophages (MGG, Perls)

                                  Hémosidérophages

                  Erythrophages                      Hémosidérophages

Thoracocentèse

Thoracocentèse
 Indication
  Epanchement pleural
  Pleuropneumonie
  Tumeur thoracique (lymphome médiastinal)
 Réalisation
  Aiguille, cathéter
  Localisation: échoguidé, ou 6°-7° EIC, 10 cm au dessus de la pointe du coude,
   au bord cranial de la côte
 Analyse
  Cytologie: Valeurs normales < 10 000 cellules/µl, 60% neutrophiles; cellules
   tumorales
  Biochimie: < 25 g/l PT
  Culture bactérienne, fongique; odeur putride: anaérobies

Biopsie pulmonaire

Biopsie pulmonaire
 Indication clinique: fièvre, dyspnée chronique,
ostéopathie hypertrophiante, bilan d’extension
 Indication radiographique
  Opacification interstitielle
  Opacification miliaire, granulomateuse

 Indication échographique
  Nodules (EMPF)
  Granulomes …

Biopsie pulmonaire
 Matériel
  Matériel tonte, asepsie, anesthésie locale (5ml lidocaine), gants
   stériles, lame n°15, compresses stériles
  Aiguille à biopsie manuelle, semi-automatique ou automatique
  Pot de formol 10% (histologie), pot stérile (bactériologie, PCR)

 Repère
  Echoguidé
  Si atteinte diffuse: 7°-8° EIC, 8 cm au dessus de la pointe du coude

Biopsie pulmonaire
Complications
  9% cas
  Toux, épistaxis, hémorragie pulmonaire
  Moins fréquent avec aiguille automatique

 Contre-indication
  Tachycardie, détresse respiratoire, abcès pulmonaire,
   pleuropneumonie

Diagnostic dans 82% cas

Prise en charge des affections
responsables de toux

Prise en charge de la toux
Atteinte pulmonaire:
 Gestion environnementale:
  Limiter poussières dans environnement
  Aération (pré/écurie)

 Gestion médicale:
 Inflammation:
  Corticoides (injection/nébulisation/aérosol)
   Bronchodilatateurs
   Mucolytiques
  Infection: antibiotiques, anti-fongiques, anti-parasitaires
  HPIE: furosémide, repos, recherche et traitement autres causes

Corticostéroïdes utilisés dans le traitement de la RAO chez le cheval

Molécule           Nom déposé      Voie    Dose                    Commentaire
                                           Fréquence
Dexaméthasone      Azium®      IM, IV      0.04-0.1 mg/kg SID      Améliore signes
                   Dexadreson®                                     cliniques, fonction
                                                                   respiratoire et LBA en
                                                                   3-7 j
                                   PO      0.05 mg/kg SID          65% biodisponibilité
                                           (poudre orale)          Amélioration en 3j
                                           0.08-0.164 mg/kg
                                           SID (forme              50% biodisponibilité
                                           injectable)
Dexamethasone      Voren®          IM      0.04-0.06 mg/kg q3j     Longue action
21-isonicotinate                                                   Ne modifie pas LBA
                                                                   après 10j
Prednisolone       Megasolone      PO      1-2 mg/kg SID           Moins efficace que
                   20®                                             dexa- Agit en 3-7j
Triamcinolone      (Vetalog®)      IM      0.04-0.09 mg/kg SID     Fourbure, Suppression
                                                                   cortisol maintenue si
                                                                   trait>3 sem

Molécule          Nom déposé       Voie              Dose         Commentaire
                                                     Fréquence
Fluticasone       Flixotide®       Nebullisation /   1-6 mg BID   Aussi efficace
                  diskus 500       Aérosol                        que dexa en
                  µg/dose                                         prévention à 6
                  poudre                                          mg BID pdt 7j
                  Ou flacon
                  pressurisé 250
                  µg/dose
Budésonide        Budésonide®      Nébullisation     800 µg BID
                  Biogaran,
                  Arrow…
Béclomethasone    Béclométasone    Aérosol           500 µg BID
                  ® TEVA,          (flacon
                  Bécotide®…       pressurisé)

Flixotide: 60 doses de 500 µg= 42.79 €
Budésonide Biogaran: 20 doses de 2 ml (1 mg) = 37.98 €
Béclométasone TEVA: 200 doses de 250 µg = 29.85 €

Prise en charge de la toux
Atteinte voies respiratoires supérieures:
 Dépend de la cause/localisation
 Traitement médical: inhalation (sirop…), voie systémique
 Traitement chirurgical (trépanation, tie forward, traitement
mycose…)

Conclusion

Conclusion
 Toux: motif fréquent de consultation
 Parfois sous-estimé par les propriétaires: toux en début de travail considérée comme normale… un
cheval sain ne tousse pas!
 Tous les chevaux avec une affection respiratoire ne présentent pas de toux (poulain rhodo!)
 Importance de différencier origine supérieure/profonde de la toux: bon examen clinique +
endoscopie
 Dans plus de 80% des cas de toux: inflammation des VRP (IAD/RAO): même si sentiment du
propriétaire = « quelquechose de coincé dans la gorge!
 Attention aux tests de dépistage allergiques proposés sur le marché: fiabilité -

Merci de votre attention
Avez-vous des questions ??