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þÿProblématique de la rétention d'Sufs chez les oiseaux mise en évidence.
Traitements & préventions
Auteur : Jalain, Lou
Promoteur(s) : Antoine, Nadine
Faculté : Faculté de Médecine Vétérinaire
Diplôme : Master en médecine vétérinaire
Année académique : 2020-2021
URI/URL : http://hdl.handle.net/2268.2/12433
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PROBLÉMATIQUE DE LA RÉTENTION D’OEUFS
CHEZ LES OISEAUX
MISE EN ÉVIDENCE
TRAITEMENTS
&
PRÉVENTIONS
PROBLEM OF EGG BINDING IN BIRDS
IDENTIFICATION
TREATMENTS
&
PREVENTION
Lou JALAIN
Travail de fin d’études
Présenté en vue de l’obtention du grade
de Médecin Vétérinaire
ANNÉE ACADÉMIQUE 2020/2021
Le contenu de ce travail n’engage que son auteur
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PROBLÉMATIQUE DE LA RÉTENTION D’OEUFS
CHEZ LES OISEAUX
MISE EN ÉVIDENCE
TRAITEMENTS
&
PRÉVENTIONS
PROBLEM OF EGG BINDING IN BIRDS
IDENTIFICATION
TREATMENTS
&
PREVENTION
Lou JALAIN
Tuteur : Pr Nadine Antoine
Travail de fin d’études
Présenté en vue de l’obtention du grade
de Médecin Vétérinaire
ANNÉE ACADÉMIQUE 2020/2021
Le contenu de ce travail n’engage que son auteur
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PROBLÉMATIQUE DE LA RÉTENTION D’OEUFS CHEZ LES
OISEAUX
MISE EN ÉVIDENCE
TRAITEMENTS
&
PRÉVENTIONS
OBJECTIF DU TRAVAIL
Le premier objectif de ce travail est de rappeler les bases de l’anatomie et de la physiologie de
l’appareil génital femelle chez l’espèce aviaire. Le second objectif est d’appréhender le diagnostic,
la prise en charge et les traitements de la rétention d’oeufs en s’appuyant sur des publications et sur
un rapport de cas réalisé à l’hôpital vétérinaire Frégis. Le troisième et dernier objectif présente les
différents moyens de prévention permettant de lutter contre l’apparition et la récidive du mal de
ponte.
RÉSUMÉ
Depuis plusieurs années, la proportion d’oiseaux présentée en clinique vétérinaire ne cesse
d’augmenter et force est de constater que la plupart des pathologies rencontrées chez ces espèces
sont liées à des erreurs de management. En effet il est primordial chez les oiseaux qu’ils bénéficient
d’une alimentation et d’un environnement adaptés à leurs besoins et leur permettant de développer
un comportement au plus proche de leurs habitudes à l’état sauvage.
La sphère génitale chez les oiseaux femelles est souvent sujet à des pathologies en raison de la
récurrence annuelle voire journalière de la ponte. Dans ce travail de fin d’étude, il sera abordé les
notions de base concernant l’appareil reproducteur femelle puis la problématique de la rétention
d’oeuf sera traitée en profondeur à l’aide de publications afin de permettre une compréhension et
une prise en charge optimale de cette pathologie car il faut toujours garder à l’esprit que la rétention
d’oeuf peut s’avérer mortelle chez l’oiseau.
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PROBLEM OF EGG BINDING IN BIRDS
IDENTIFICATION
TREATMENTS
&
PREVENTION
AIM OF THE WORK
The first objective of this work is to recall the basics of the anatomy and physiology of the female
genital apparatus in the avian species. The second objective is to understand the diagnosis, the
management and treatment of egg retention based on publications and on a case report from the
Frégis Veterinary Hospital. The third and final objective presents the different means of prevention
to combat the appearance and recurrence of egg binding syndrome.
SUMMARY
For the last few years, the number of birds admited to veterinary clinics keeps increasing. Their
pathology are very often linked to errors of management.
Indeed, it is essential that birds are provided with the food and an environment that is adapted to
their needs. This will help allow them to develop a behaviour that is going to be as close as possible
to their habits in the wild.
The genital area of female birds is often subject to pathology due to the annual or daily recurrence
of egg laying.
In this end of the year thesis, the basic concepts of the female reproductive system will be
presented. The problem of egg retention will be treated in depth with the help of publications in
order to allow an understanding and an optimal management of this pathology because it must
always be kept in mind that egg retention can be fatal in birds.
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REMERCIEMENTS
À ma promotrice, Pr Nadine Antoine, pour ses lectures et corrections et aussi pour m’avoir laissé
choisir un sujet qui me plaît et me tient à coeur.
À ma mère (Corinnette la chouette) qui à force de lire et relire mon TFE est tout aussi apte que moi
de vous présenter ce travail aujourd’hui. Merci d’être la super maman que tu es et de croire en moi
même si le chemin n’est pas toujours facile.
À mon père qui au regret d’avoir une fille littéraire a corrigé les fautes d’orthographes de ce travail
d’écriture avec une main de maitre. Un grand merci.
À ma grand mère, Voilà mamie je finis bientôt mon « jeu » et si je dois dédier cela à une personne
c’est à toi !
À Maryse, Parce que des mamans j’en ai presque 2 ! Merci d’avoir toujours cru en moi et de
m’avoir soutenu pendant toutes ces années.
À Clémence, la meilleure des colloc’s (vive la buanderie) pour ses blocus depuis le début et ses
années (un peu trop longues) qui arrivent bientôt à leur fin.
À Yaboumba Junior et tous les super veto que j’y ai pu y rencontrer : Norin, Minh, Flo, Goulven,
Marie, Olivier et j’en passe. Je ne serais pas là sans vous et la passion que vous avez su me
transmettre. Et l’aventure ne fait que commencer !
À Eustache, Parce qu’on a tous besoin d’une petite boule de poils pour réussir ses études
vétérinaires et je pense être tombée sur la meilleure !
À tous les autres, la team bla-bla, le groupe 23, la buanderie, les gringos et j’en passe qui ont
toujours été présent dans les bons comme dans les moins bons moments.
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!TABLE DES MATIÈRES
1. INTRODUCTION 7
2. RAPPELS 7
2.1 Anatomie de l’appareil génital femelle 7
2.2 Physiologie de la reproduction 9
2.2.1 Rythme nycthéméral 10
2.2.2 Composition alimentaire et score corporel 10
2.2.3 Nombre d’oeufs par saison de reproduction 10
3. CAUSES 11
3.1 Oeuf de taille, forme et/ou dans une position inappropriée 11
3.2 Infection concomitante 11
3.3 Alimentation 11
3.4 Lien affectif 12
4. MISE EN ÉVIDENCE DE LA PATHOLOGIE 12
4.1 Signalement 12
4.1.1 Reconnaissance de l’espèce et de ses particularités 12
4.1.2 Determination du sexe 13
4.1.3 Âge 15
4.2 Anamnèse 15
4.3 Examen général 16
4.3.1 Observation à distance 17
4.3.2 Examen rapproché 17
4.4. Examens complémentaires 17
4.4.1 Radiographie 17
4.4.2 Echographie 18
4.4.3 Analyse sanguine 19
4.5 Complications 19
5. TRAITEMENTS 20
5.1 Adaptation environnementale 20
5.2 Gestion médicale 20
5.2.1 Réhydratation 20
5.2.2 Supplémentation calcique 21
5.2.3 Gestion de l’hypoglycémie 21
5.2.4 Support analgésique 21
5.2.5 Lubrification 22
5.2.6 Ocytocine 22
5.2.7 Les prostaglandines 23
5.3 Gestion chirurgicale 23
5.3.1 Taxis 23
5.3.2 Ovocentèse 23
5.3.3 Salpingohystérectomie 24
5.3.4 Étude de cas - CHV Frégis 25
6. PRÉVENTION 26
6.1 Gestion de l’environnement et de l’alimentation 26
6.2 Implant de désloréline 27
7. CONCLUSION 28
8. BIBLIOGRAPHIE 29
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!1. INTRODUCTION
La médecine des nouveaux animaux de compagnie (NAC) est en constant développement.
Les cliniques vétérinaires spécialisées en NAC se font de plus en plus nombreuses afin de répondre
à une demande de soins croissante chez ces espèces exotiques.
La proportion de propriétaires d’oiseaux domestiques augmente et la notion de soins chez ces
animaux se développe grandement. Il n’est pas rare aujourd’hui de voir arriver en consultation une
poule ou un canari… des espèces qui étaient il y a encore quelques années considérées comme
« interchangeables », notamment en raison de leur faible prix d’achat. La valeur affective des
propriétaires envers leurs oiseaux ne dépassait pas la valeur financière que représente les soins.
En tant que vétérinaire exerçant auprès d’espèces aviaires, la connaissance du système reproducteur
femelle est indispensable. En effet, de nombreuses pathologies chez ces animaux sont liées à la
reproduction. Cela s’exprime notamment par des problèmes de rétention d’oeufs conduisant à
l’affaiblissement rapide de l’animal pouvant aller jusqu’à la mort. Cela est donc une situation
d’urgence dont le mécanisme doit être connu.
La ponte est un phénomène naturel lié au cycle oestral. Cependant le milieu de vie, l’alimentation,
ainsi que les sollicitations sociales, sont nombre de facteurs pouvant modifier de manière croissante
ou au contraire décroissante la production des oeufs. Il est donc indispensable d’avoir connaissance
de ces différentes notions afin de prévenir l’apparition de dystocie.
Afin de comprendre et de savoir appréhender le mal de ponte, il est important de revoir l’anatomie
ainsi que la physiologie de la reproduction chez les oiseaux.
Ensuite des notions plus cliniques seront proposées en commençant par le signalement, les
situations pouvant favoriser la rétention d’oeufs, les examens complémentaires ainsi que la gestion
médicale et/ou chirurgicale nécessaire à la prise en charge de ce type de cas.
Pour terminer, une réflexion sur les techniques disponibles permettant d’interrompre ou de limiter la
ponte sera abordée.
2. RAPPELS
2.1 Anatomie de l’appareil génital femelle
Chez la plupart des oiseaux, seul l’ovaire gauche est développé (Hoppes, 2015). Cependant il arrive
que les 2 ovaires se développent de manière symétrique comme c’est le cas chez le Kiwi (Apteryx)
et plusieurs espèces de rapaces (Bowles, 2011).
L’ovaire gauche se localise caudalement à la glande surrénale, dans le sac aérien abdominal gauche.
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!En fonction de la période d’activité sexuelle la taille de l’ovaire varie. Il va passer d’une petite
masse grisâtre à une grappe jaunâtre formée de nombreux follicules en développement au moment
de la période de reproduction.
La morphologie de l’oviducte va elle aussi évoluer au cours du cycle.
L’oviducte est suspendu dans la cavité péritonéale par un ligament ventral et un ligament dorsal. Il
est composé de 5 segments (Hoppes, 2015) (Figure 1) :
• L’infundibulum vient coiffer l’ovaire afin de capter les follicules matures. C’est le lieu de la
fécondation.
• Le magnum est la portion la plus large de l’oviducte. On l’appelle aussi conduit albuminipare
car une quantité importante d’albumen va y être sécrétée.
• L’isthme est facilement repérable grâce à sa couche musculaire épaisse. Dans cette portion du
tractus les membranes coquillères vont être formées.
• L’utérus est la portion la plus courte. La sécrétion de calcite va permettre la formation de la
coquille.
• Le vagin quand à lui a un rôle exclusivement de transit. Il vient s’ouvrir dans le cloaque au
niveau de l’urodéum.
Pour parcourir l’ensemble de ce trajet et ainsi passer d’un follicule à la ponte d’un oeuf, il faut
compter en moyenne 24h. (Saranya et al., 2017)
Figure 1. Représentation schématique de l’appareil reproducteur femelle des oiseaux (Frank et
Freeman, 2007).
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!Avant d’obtenir un oeuf, c’est à dire une cellule germinale femelle incluse dans un follicule,
plusieurs mécanismes de maturation se mettent en place : l’ovogenèse et la folliculogenèse. Ces
deux mécanismes sont indissociables puisque l’ovocyte se développe dans une structure nommée
follicule ovarien.
Dès la vie embryonnaire, un stock de cellules germinales primordiales se forme par divisions
mitotiques. Ce stock est fixe pour toute la vie reproductive de l’animal, il n’y aura donc pas de
division postnatale.
Lors de la puberté, le cycle oestral se met en place. Chaque cycle entraine la reprise de la division
d’un ou plusieurs ovocytes. Parallèlement à cela, le follicule se différencie.
Dans un premier temps, un follicule primordial formé d’une monocouche de cellules folliculeuses
va venir entourer l’ovocyte primaire. Puis il se différencie en follicule primaire composé d’une
multicouche de cellules folliculeuses. Progressivement, une architecture en couche de cellules
différenciées se met en place pour donner un follicule secondaire. Ensuite, des cavités viennent se
former donnant un follicule tertiaire. L’architecture continue à s’organiser autour de l’ovocyte et les
cavités se rassemblent pour donner une cavité antrale ; on parle de follicule mature ou « follicule de
Graaf » (Figure 2).
Toutes ces modifications histologiques permettent de réguler le cycle puisque chacune des cellules
joue un rôle dans la reprise ou non du cycle oestral en fonction de l’imprégnation hormonale.
Chez les oiseaux peu importe si l’oeuf est fécondé ou non, celui-ci sera tout de même produit car
cela fait parti du cycle reproducteur. Il sera alors prêt à entamer son parcours dans l’oviducte
jusqu’à la ponte.
Figure 2. Schéma représentant le développement folliculaire (Araujo et al., 2014).
2.2 Physiologie de la reproduction
La maturité sexuelle varie d’une espèce à l’autre :
• 18 semaines chez la poule (Gallus gallus) (Bulliot et Quinton, 2020)
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!• 3 à 5 ans chez les grands perroquets comme les Gris du Gabon (Psittacus erithacus) (Pallardy,
2020)
• 6 mois à 1 an chez les calopsittes (Nymphycus hollandicus) (Pollock, 2012.).
La ponte va être régulée par différents facteurs développés si-dessous.
2.2.1 Rythme nycthéméral
La plupart des oiseaux domestiques que l’on peut rencontrer en Belgique et en France sont des
espèces à luminosité croissante (Seibert, 2007). C’est à dire qu’une augmentation de la durée
d’éclairement va stimuler la production de Mélatonine par la glande pinéale et par effet cascade la
production de GnRH au niveau de l’hypothalamus puis de LH et FSH par l’hypohyse. Une
augmentation de la durée d’éclairement va donc stimuler les comportements sexuels (Seibert,
2007).
2.2.2 Composition alimentaire et score corporel
À l’état sauvage, le score corporel augmente au moment de la période de reproduction. En effet, la
conception ainsi que la ponte sont des mécanismes nécessitant beaucoup d’énergie. Il est nécessaire
pour que la femelle puisse mener à bien son cycle reproducteur, qu’elle trouve une alimentation
riche et équilibrée. Si on prend le cas du gris du Gabon (Psittacus erithacus), la période de
reproduction coïncide avec la formation des bourgeons et des fruits, qui viennent apporter une
quantité importante de vitamines, de sucre, de calcium, de protéines,… qui sont des éléments
fondamentaux au bon développement de la ponte. En revanche à l’état domestique, la plupart des
oiseaux reçoivent une alimentation non adaptée (Seibert, 2007) : très riche en graisse, notamment
avec les oléagineux : graines de tournesol, amande, noix,… et pauvre en fruits et en aliments riches
en calcium. De plus, en captivité, les animaux volent peu, ils n’ont pas de trajet à faire afin de
trouver leur repas, ni d’efforts à faire pour chercher leur nourriture (Péron et Grosset, 2013)… Les
animaux vont donc avoir tendance à être beaucoup trop gras , à développer des pathologies comme
l’arthérosclérose ou des problèmes hépatiques (Bavelaar et Beyen, 2004) ainsi que des problèmes
de rétention d’oeufs étant donné que leur alimentation, bien que présente en quantité importante,
soit inappropriée voir délétère par rapport à leurs besoins.
2.2.3 Nombre d’oeufs par saison de reproduction
Le nombre d’oeufs pondus par saison de reproduction est illimité chez certaines espèces comme
c’est le cas de la poule (Gallus gallus) ou des inséparables (Agapornis) alors qu’au contraire il va
être fixe chez d’autres comme l’amazone (Amazona) ou la calopsitte (Nymphycus hollandicus).
(Bulliot et Mentré, 2016)
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10 !Chez les espèces dont le nombre d’oeufs par saison de reproduction est illimité il faut faire attention
à l’apparition de « pondeuse chronique ».
La ponte chronique est un phénomène au cours duquel l’oiseau va se mettre à pondre de manière
continue, peu importe l’endroit (dans sa mangeoire, au sol,…), la saison et la présence ou non d’un
congénère (André, 2005). Ce mécanisme est encore mal compris mais des troubles endocriniens,
des facteurs génétiques ainsi que les perturbations lié à la domestication seraient à incriminer
(André, 2005). Les calopsittes sont particulièrement touchés par cette pathologie mais ne sont pas
les seuls à pouvoir en souffrir (André, 2005).
3. CAUSES
Les raisons pouvant entrainer la rétention d’oeufs sont multiples. Il n’y a jamais une seule cause
responsable mais une origine multifactorielle.
3.1 Oeuf de taille, forme et/ou dans une position inappropriée
Tout d’abord l’oeuf peut avoir eu un développement normal : Coquille calcifiée de manière
adéquate, développement en un temps approprié, mais avoir une position ou une dimension ne
permettant pas son expulsion (Rosskopf et Woerpel, 1984).
3.2 Infection concomitante
L’oiseau peut présenter une infection concomitante l’empêchant de mobiliser suffisamment
d’énergie et de tonus musculaire pour pondre. On peut être confronté à une maladie infectieuse,
néoplasique, à un traumatisme ou un phénomène inflammatoire au niveau du système reproducteur
mais également à une pathologie dans un autre système voire à une maladie généralisée.
3.3 Alimentation
Chez les oiseaux comme chez beaucoup d’autres espèces, la nutrition et plus particulièrement le
métabolisme énergétique influence la reproduction. On va observer des modifications de sécrétions
hormonales venant jouer sur l’axe hypothalamo-hypophyso-gonadien.
Chez les oiseaux femelles immatures consommant une alimentation trop riche et/ou en quantité trop
importante, la puberté va apparaitre précocement et s’accompagne de dysfonctionnements du cycle
reproducteur. Notamment avec une fréquence de ponte augmentée, des ovulations multiples,
l’apparition d’oeufs anormaux : Déformés et/ou mous ce qui peut générer des problèmes de
rétention d’oeufs (Briere et al., 2011).
! sur 31
11 !De même une alimentation non adaptée va provoquer des déséquilibres comme l’apparition d’une
hypocalcémie or le calcium est indispensable à la formation de l’œuf et à la contraction des
muscles.
Il faut garder à l’esprit qu’avec un régime correctement équilibré, un oiseau en rétention d’oeufs
peut tout de même présenter une hypocalcémie si la demande en calcium nécessaire à la formation
de l’oeuf et à la ponte dépasse les apports. De plus, les oiseaux et en particuliers les psittacidès ont
tendance à trier leur nourriture. Donc bien qu’en proposant une alimentation diversifier si les
oléagineux sont présents en quantité importante dans la ration, ils auront tendance à ne manger que
ceci. Il faut prendre garde à bien diversifier l’alimentation mais surtout au proportions de chacun
des composants (Péron et Grosset, 2013).
3.4 Lien affectif
Les oiseaux et plus particulièrement les psittacidés sont des oiseaux grégaires. En captivité ils
entretiennent un lien particulièrement important avec les autres habitants (animal ou humain) de la
maison (Seibert, 2014). Une hiérarchie va se mettre en place comme à l’état sauvage ainsi que des
liens affectifs plus ou moins importants avec certains individus du foyer.
En ce qui concerne les propriétaires, ils ne sont pas toujours suffisamment renseignés sur l’impact
que certains gestes, sons, mimiques, marques d’affection (bisous, caresse,…) peuvent avoir sur leur
oiseau. Il arrive que l’animal assimile un membre de la famille à son partenaire sexuel, il va alors
avoir envers lui des comportements sexuels qui peuvent se caractériser par des frottements et des
régurgitations (Hoppes, 2015). Les différentes stimulations sensorielles vont jouer sur les sécrétions
hormonales et sur le cycle reproducteur. Les risques de rétention d’oeufs sont alors exacerbés.
4. MISE EN ÉVIDENCE DE LA PATHOLOGIE
4.1 Signalement
4.1.1 Reconnaissance de l’espèce et des ses particularité
La connaissance de l’espèce est également très interessante car elle permettra de donner une idée du
nombre d’oeufs pondus par période de reproduction. En effet celui-ci est variable d’une espèce à
l’autre : 2 chez les colombes diamant (Geopelia cuneata), 4 chez les canaris (Serinus canaris
domestica) 3 à 4 chez les youyous du Sénégal (Poicephalus senegalus),… (Bulliot et Mentré,
2016). Le nombre d'oeufs déjà pondus sera alors un élément à prendre en compte car il indiquera si
un ou plusieurs oeufs sont encore en route, si une attention particulière doit encore être apportée
! sur 31
12 !après la résolution du problème ou si l’oeuf en rétention était le dernier de la saison. D’autres
espèces comme les volailles ou les calopsittes (Nymphicus hollandicus) au contraire ne pondent pas
un nombre fixe d’oeufs par saison de reproduction. (Simone-Freilicher, 2021)
En moyenne les oeufs sont pondus avec un intervalle de 48h entre chaque ponte (Saranya et al.,
2017)
4.1.2 Détermination du sexe
Dans un premier temps lorsqu’on va recevoir un oiseau en consultation, il est important de savoir si
l’animal est sexé (Simone-Freilicher, 2021). Cela est valable chez les oiseaux mais aussi chez
d’autres espèces de NAC comme les reptiles car contrairement aux mammifères le sexe ne peut pas
toujours être mis en évidence par simple observation.
Certains oiseaux présentent un dimorphisme sexuel (Figure 3) comme c’est le cas notamment chez
les cacatoès à huppe jaune (Cacatua galerita), les perruches ondulées (Melopstittacus undulatus),
les poules (Gallus gallus), les eclectus (Eclectus roratus),… Cela va se traduire par un plumage de
couleur différente, une modification de la couleur des cires ou de l’iris, un développement plus
important du plumage, de la crête ou des barbillons,… (Bulliot et Mentré, 2020). Dans ce cas il est
aisé de faire la différence entre mâle est femelle.
Figure 3. Photographie de deux perruches ondulées Figure 4. Photographie d’un gris du
(Melopsittacus undulatus) femelle (à gauche) - mâle Gabon (Psittacus erithacus)
(à droite)
Par contre chez d’autres espèces comme les Gris du Gabon (Psittacus erithacus), les amazones à
front bleu (Amazona aestiva), les inséparables (Agapornis),… aucun dimorphisme n’existe (Bulliot
et Mentré, 2016) (Figure 4). Il faut alors avoir recours à d’autres techniques de sexage.
Technique non invasive (André, 2005) :
• Analyses génétiques :
! sur 31
13 !Contrairement aux mammifères, chez les oiseaux, ce sont les femelles qui déterminent le sexe de
leur descendance. En effet, ce sont elles qui sont hétérogamétiques (ZW) alors que les mâles sont
homogamétiques (ZZ).
Cette analyse peut se faire sur un échantillon de sang ou sur plume.
• Cytométrie de flux :
Cette technique permet une étude de la quantité d’ADN contenue dans le noyau des cellules. Il
semblerait que le chromosome Z soit plus grand que le chromosome W et par conséquent les mâles
auraient une quantité d’ADN légèrement supérieure aux femelles. Cette technique est peu utilisée
car très couteuse et ne présentant pas d’intérêt supérieur aux autres techniques disponibles.
• PCR :
Cette technique repose sur le même fonctionnement que l’analyse génétique à savoir une
observation du génome. Mais elle permet par une technique d’amplification de déterminer le sexe à
l’aide de quantité infime d’ADN.
La PCR sera utilisée si des plumes ou du sang ne peuvent pas être récoltés en quantité suffisante.
Cette situation peut se présenter en faune sauvage mais pas chez des espèces domestiques puisque
l’oiseau est physiquement présent en consultation.
Technique invasive (André, 2005) :
• Endoscopie :
Cette technique nécessite une anesthésie flash de l’animal ce qui n’est jamais sans risque. Les
avantages de cette technique sont sa fiabilité à 100% puisqu’elle permet de voir les gonades, de plus
elle permet de faire un check des différents organes et de connaitre le statut physiologique
reproducteur de l’animal au moment de l’examen. Cependant cette technique nécessite un matériel
couteux, une manipulation précise et une grande connaissance de l’anatomie.
En prenant en considération le coût de ces différentes techniques et la notion de risque/bénéfice
encouru par l’oiseau, l’analyse génétique est la technique à retenir en première intention.
L’endoscopie est une technique à envisager si l’oiseau n’est pas sexé et qu’il présente d’autres
pathologies non expliquées et pour lesquelles un check-up des organes ou des biopsies pourraient
donner des informations supplémentaires.
! sur 31
14 !4.1.3 Âge
Il est également important de connaitre l’âge de l’oiseau. L’âge va prédisposer l’oiseau à certaines
maladies ou au contraire en exclure de notre diagnostic. En ce qui concerne la rétention d’oeufs, un
oiseau non pubère ne sera pas sujet à cette pathologie.
L’âge de la maturité sexuelle va varier d’une espèce à l’autre. Il est important d’en avoir
l’information car les différences sont importantes.
Les grands perroquets seront à maturité sexuelle vers 3 à 6 ans (Pallardy, 2020), 6 mois à 1 an pour
une calopsitte (Nymphycus hollandicus) (Pollock, 2012.), 18 semaines chez la poule (Gallus gallus)
(Bulliot, Quinton, 2020)…
Certains comportements peuvent orienter le diagnostic vers la rétention d’oeufs. Notamment si
l’oiseau présente des comportements sexuels. Cela peut se manifester de différentes manières
notamment par des régurgitations, un intérêt particulièrement important envers un objet ou un
membre de la famille ainsi qu’une position caractéristique en se frottant sur des surfaces queue
pointé vers le haut chez les femelles, vers le bas chez les mâles (Simone-Freilicher, 2021)
4.2 Anamnèse
Lors de la prise des commémoratifs et après avoir reçu le signalement de notre animal, il est
nécessaire de se renseigner sur les conditions de vie de l’oiseau, les changements ayant pu survenir
dans son environnement ainsi que les éventuels antécédents médicaux (Sudhakara et Sivajothi,
2018) :
• Depuis combien de temps l’oiseau est-il chez vous ?
• Y a t’il eu des changements dans sa vie ? Déménagement ? Perte d’un proche (animal ou
humain) ? Arrivée d’un nouvel habitant (animal ou humain) dans le lieu de vie ? Changement
alimentaire ? Modification de rythme de vie (propriétaire plus absent, moins de sorties) ?
Changement de cage ou de pièce ?
• Vit-il en cage ou en volière ?
• Vit-il avec des congénères ? Sont-ils de la même espèce ? Est ce que le sexe des autres oiseaux
est connu ?
• Quel type d’alimentation est mis à sa disposition ? En quelle quantité ? Est-ce une alimentation
diversifiée ?
• Dans quelle pièce se trouve la cage ?
• À quelle heure levez vous et couchez vous l’oiseau ? Sa cage est-elle recouverte par un drap
occultant durant les phases de repos ?
! sur 31
15 !• Comment est organisée la cage ? Est ce qu’on retrouve un nid dans la cage ?
• Est ce que l’oiseau présente des comportements sexuels ? Masturbation sur des objets (oiseau
qui se frotte le cloaque sur les perchoirs,…) ? Présente t’il des comportements sexuels vis à vis
des autres animaux ou des humains (régurgitation, frottements) ?
• Quel lien entretient le propriétaire avec son oiseau ? Est-ce que l’oiseau est exclusif envers un
membre de la famille ? Comment le propriétaire interagit-il avec son oiseau (caresse sur des
parties érogènes, bisous,…) ?
• L’oiseau a t’il déjà présenté des antécédents médicaux ? De la sphère reproductrice ou autre ?
Ensuite on va s’intéresser aux motifs ayant poussé le propriétaire à venir consulter :
• Depuis combien de temps observez-vous un changement de comportement chez votre animal ?
• Avez vous déjà observé chez lui un comportement similaire ? Comment cela s’est-il résolu ?
• L’oiseau semble t’il se dégrader ou son état est-il stable ?
• Quels sont les changements de comportement observés ?
• Est-ce que l’oiseau à déjà pondu ? À combien de temps remonte cette épisode de ponte ? Avez
vous une idée du nombre d’oeufs qui a été pondu ?
• L’oiseau a t-il pondu au cours des derniers jours ? Si oui combien d’oeufs ?
Toutes ces réponses permettront de préciser progressivement le diagnostique et d’élaborer le plan
d’action pour la prise en charge de l’oiseau. Il faut savoir qu’un oiseau arrivant en état critique doit
être manipulé avec énormément de précautions et le moins possible. Avoir un maximum
d’informations va donc être une aide indéniable car cela permettra de juger quels sont le ou les
examens à réaliser en priorité.
De même au delà de 12h d’efforts expulsifs non concluant, des conséquences néfastes pour l’oiseau
peuvent apparaitre comme une hypocalcémie, une hypoglycémie ou encore une déshydratation
(Simone-Freilicher, 2021). On constate une fois encore l’importance d’une anamnèse précise pour
mettre en place une prise en charge complète.
4.3 Examen général
Après l’anamnèse, l’examen clinique fournira un complément d’informations crucial permettant de
définir si des examens complémentaires sont nécessaires et si oui lesquels. De même cela orientera
la prise en charge environnementale, médicale et éventuellement chirurgicale permettant de lever la
dystocie et d’éviter les récidives.
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16 !4.3.1 Observation à distance
Dans un premier temps, une observation à distance de l’oiseau renseignera sur son état d’éveil ainsi
que sur son comportement. Il ne faut pas oublier que le transport génère un stress important pour
l’oiseau et que son comportement peut être modifié provisoirement (décharge d’adrénaline)
(Dennis, 2016). De plus les espèces aviaires (à l’exception des rapaces) étant des proies à l’état
sauvage, elles ont la faculté de masquer leur douleur afin de ne pas sembler vulnérables aux yeux de
leurs prédateurs. (Douglas et al., 2018)
L'oiseau en rétention d’oeufs peut présenter une position algique : en boule, mouvements de queue
(« tail-bob-bing » synchrone à la respiration liée à la compression des sacs aérien), abattu, incapable
de se percher, pattes écartées (Mentré, 2017)
4.3.2 Examen rapproché
Ensuite une manipulation peut s’avérer utile afin de mettre en évidence un effet de masse au niveau
de la cavité coelomique, mais aussi pour évaluer les fonctions vitales à savoir la fréquence
cardiaque ainsi que la fréquence respiratoire (Mentré, 2017). Mais attention la manipulation peut
s’avérer délétère pour l’oiseau.
Il est parfois précieux dans un premier temps de placer l’oiseau sous oxygène afin de rétablir une
oxygénation correcte avant toute manipulation, d’autant plus si d’autres manipulations sont ensuite
nécessaires. En effet il sera peut être utile par la suite de réaliser une radiographie ou une prise de
médicaments.
Toutes les manipulations doivent être réfléchies afin de ne pas accentuer le stress engendré par la
manipulation, le changement d’environnement ainsi que par la douleur provoquée par le mal de
ponte.
4.4 Examens complémentaires
Une fois les commémoratifs recueillis et l’examen clinique réalisé, si l’animal est suffisamment
stable, la confirmation de la dystocie va se faire à l’aide d’examens complémentaires.
L’examen de choix va être la radiographie car si l’oeuf est calcifié il sera facilement visible.
4.4.1 Radiographie
La radiographie est un examen complémentaire largement utilisé en médecine vétérinaire.
Chez les oiseaux, il va notamment permettre d’observer la silhouette des différents organes, de
mettre en évidence une intoxication au métaux lourds, une fracture ou un problème de rétention
d’oeufs. En effet, l’oeuf étant une structure calcifiée, il sera facilement visible à la radiographie.
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17 !Pour rappel la radiographie utilise les rayon X à faible émission. Certains atomes absorbent plus les
rayons X que d’autres, c’est le cas des atomes de magnésium, phosphore, calcium que l’on retrouve
en quantité plus importante dans les os. Cela explique les différences de contraste en fonction des
tissus. Les oeufs comme les os étant riches en calcium absorberont d’avantage le faisceau de rayon
X et apparaitront d’autant plus blanc sur l’image radiographique (Simand, 2009).
La radiographie va donner de nombreuses informations comme la taille, la minéralisation et la
densité de l’oeuf mais aussi son orientation, sa forme sa localisation ou encore le nombre d’oeufs
présents (Figure 5).
La limite de cet examen est qu’avant son passage dans l’utérus, l’oeuf n’est pas calcifié et donc non
visible à la radiographie (Hoppes, 2015). On peut cependant observer un élargissement de la masse
viscéral mais cela n’est pas suffisant pour confirmer notre diagnostic de rétention d’oeufs. Dans ce
cas, il faudra envisager un nouvel examen telle que l’échographie (Devaux et al., 2014).
Si l’oiseau est trop faible pour être anesthésié ou maintenu immobile par contention afin de réaliser
une radiographie standard, il est toujours possible de réaliser une radiographie « in the
box » (Figure 6) c’est à dire que l’oiseau est simplement placé en position physiologique sur la
cassette et une image radiographique est tirée telle quelle (Simone-Freilicher, 2021).
Figure 5. Radiographie réalisée chez un gris du Figure 6. Radiographie
Gabon présentant une rétention d’oeufs « in the box »
(FMV Liège) (Simone-Freilicher, 2021)
4.4.2 Echographie
L’échographie (Figure 7) sera réalisée si la radiographie ne permet pas la mise en évidence de
l’oeuf. C’est à dire si l’oeuf n’est pas calcifié (Devaux et al., 2014).
L’avantage de cette technique d’imagerie est qu’elle est sans danger pour l’animal. En effet, elle ne
nécessite ni rayonnement ionisant ni produit de contraste.
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18 !Elle fonctionne grâce à des ultrasons c’est à dire des vibrations mécaniques qui vont se propager
dans la matière. En fonction du milieu traversé la longueur d’onde varie et permet de différencier
les organes (Dauzat, 2013).
Figure 7. Image échographique de la cavité coelomique mettant en évidence un oeuf non calcifié
(CHV Atlantia)
4.4.3 Analyse sanguine
Une analyse sanguine ne sera pas faite systématiquement mais pourra renseigner sur la présence
d’une hypocalcémie ou d’une hypoglycémie comme évoqué précédemment.
4.5 Complications
Suite à la rétention d’oeufs des complications peuvent apparaitre. Elles dépendent de la localisation
de l’obstruction et du temps endéans lequel l’oeuf a été coincé.
Si l’oeuf se trouve bloqué au niveau du bassin, des gros vaisseaux peuvent être comprimés et
conduire à un choc ou perturber la sécrétion de fiente.
Des lésions rénales et nerveuses peuvent aussi apparaitre, notamment par compression du nerf
sciatique (Rosskopf et Woerpel, 1984).
Un autre type de pathologie peut se mettre en place si l’effort expulsif à tendance à se prolonger
dans le temps et de manière non productive. Il s’agit de fractures pathologiques secondaires à une
hypocalcémie (Simone-Freilicher, 2021).
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19 !5. TRAITEMENTS
La prise en charge médicale de l’oiseau en rétention d’oeufs va se faire en plusieurs étapes plus ou
moins invasives et va être variable d’un oiseau à l’autre. Le succès de ce traitement sera lui aussi
variable et dépendra notamment de la durée de la maladie, du moment auquel l’oiseau arrive chez le
vétérinaire.
Un oiseau présenté en choc aura évidemment moins de chance de s’en sortir qu’un oiseau
présentant un examen clinique correct.
5.1 Adaptation environnementale
Dans un premier temps l’oiseau va être placé dans un environnement le plus propice possible à la
ponte. C’est à dire un endroit sombre (Seibert, 2007), chaud (28 à 30°C), calme et suffisamment
humide (Mentré, 2017). Cela permettra de diminuer le stress de l’oiseau et de détendre sa
musculature cloacale (Rosskopf et Woerpel, 1984). Une supplémentation en oxygène peut
également s’avérer nécessaire si l’oiseau arrive en dyspnée.
De l’eau doit toujours être mise à disposition de l’oiseau pour lui permettre de s’hydrater oralement.
Ces différents aménagements peuvent déjà être mis en place au domicile du propriétaire en
attendant l’heure ou le jour du rendez-vous ou si celui-ci ne souhaite pas venir en urgence.
Évidemment il est conseillé ce-dernier de venir à la clinique le plus rapidement possible car plus le
cas est pris en charge tôt, plus il y a de chance que l’issue soit positive pour l’animal.
5.2 Gestion médicale
Ensuite différents traitements médicaux vont être mis en place en fonction de l’état de l’oiseau et de
l’évolution de sa clinique.
5.2.1 Réhydratation
Tout d’abord une réhydratation va être entreprise soit à l’aide d’un cathéter qui peut être placé au
niveau de la veine ulnaire (facilement visible sur la face médiale de l’articulation du coude) ou en
intraosseux au niveau du radius ou du tibiotarse (Avanzi et Huynh, 2020).
Un cathéter au niveau du fémur et de l’humérus ne devra jamais être placé puisqu’il s’agit d’os
pneumatiques. Il y a un risque de noyer l’oiseau (Avanzi et Huynh, 2020).
Soit en sous cutanée au niveau du pli axillaire ou inguinal.
Le choix de la voie d’administration dépendra de la taille de l’oiseau. La voie intraveineuse étant
idéale chez les oiseaux de grandes tailles à savoir au delà de 300gr (Avanzi et Huynh, 2020) et si
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20 !l’animal est suffisamment stable pour supporter la contention ou l’anesthésie nécessaire à la pose de
cathéter.
Du Ringer lactate chauffé afin de ne pas refroidir l’oiseau sera alors administré à hauteur de 50mL/
kg/j (Mentré, 2017).
5.2.2 Supplémentation calcique
Du Gluconate de Calcium va aussi être administré en intramusclulaire à hauteur de 5 à 20mg/kg
toutes les 4 heures (Sudhakara Reddy et Sivajothi, 2018).Cette posologie est variable en fonction de
l’espèce concernée. Comme vu précédemment, cela permettra d’aider l’oiseau à terminer la
calcification de la coquille et lui fournira le calcium nécessaire aux contractions musculaires, lui
permettant d’expulser son oeuf, étant donné raison des efforts expulsifs entrepris il aura déjà puisé
dans ses réserves osseuses (Saranya et al., 2017).
En association à cet ajout de Calcium, l’oiseau peut recevoir une supplémentation en vitamine D à
hauteur de 3300 UI/kg par voie intra-musculaire en une prise (Simone-Freilicher, 2021) puisque la
vitamine D favorise l’absorption du calcium.
5.2.3 Gestion de l’hypoglycémie
L’animal en hypoglycémie peut recevoir une complémentation en glucose 30% (G30) par voie orale
à la dose de 0,01 à 0,03cc selon la taille de l’oiseau (Simone-Feilicher, 2021). Cela permet à
l’oiseau de recevoir un apport énergétique d’hydrate de carbone rapidement mobilisable. Il est aussi
possible d’ajouter du glucose 5% dans la perfusion. La poche sera alors composée de 4/5 de RL et
d’1/5 de G5 (Chai et al., 2017).
5.2.4 Support analgésique
Un support analgésique va être important. L’analgésie la plus fréquemment utilisée chez l’oiseau est
le butorphanol à la dose de 1 à 2mg/kg en intra-musculaire au niveau des muscles du bréchet toute
les 2 à 8 heures mais cette posologie est variable en fonction de l’espèce (Chai et al., 2017). Cette
molécule fait partie de la famille des opioïdes et a pour inconvénient ou au contraire avantage
d’avoir une demi-vie n’excédant pas 1 heure. Cela peut être positif car l’objectif n’est pas de
masquer pendant une durée trop importante les symptômes de l’oiseau mais au contraire de voir si
son état s’améliore et à quelle vitesse. Cependant elle nécessite de part sa courte durée de demi-vie
une évaluation fréquente de l’oiseau afin de renouveler ou non la dose d’opioïde. Un autre effet
indésirable dans le cas de la rétention d’oeufs est que le butorphanol a tendance à entrainer une
dépression respiratoire. Or nous avons vu que l’oiseau pouvait déjà souffrir de dyspnée en raison de
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21 !l’écrasement des sacs aériens par l’effet de masse lié à la présence de l’oeuf dans la cavité
coelomique.
Une autre alternative se présente à nous afin de gérer la douleur. Il s’agit du Meloxicam à la dose de
1 à 2mg/kg en sous-cutanée ou en intra-musculaire toutes les 12 à 24h mais cette posologie est
variable en fonction de l’espèce. La dose est plus impressionnante chez la poule (Gallus gallus)
puisqu’elle va jusque 5mg/kg (Chai et al., 2017). Cette molécule fait partie de la famille des anti-
inflammatoires non stéroïdes. Sa demi-vie va être plus longue que le Butorphanol puisqu’ici on
parle d’une demi-vie de 12h. Comme pour les opioïdes, des effets indésirables existent avec cette
molécule… Le Meloxicam provoque des problèmes hépatiques et des problèmes rénaux. Or encore
une fois les reins peuvent déjà être en souffrance à cause de la rétention d’oeufs qui provoque une
ischémie rénale. Un autre effet indésirable indéniable est que le Meloxicam va inhiber la ponte
puisqu’il bloque les prostaglandines (Roskar et al., 2014).
Chez un oiseau présenté pour rétention d’oeufs le butorphanol sera idéalement utilisé avant la
résolution de la dystocie. En effet sa courte durée d’action permettra au vétérinaire d’adapter sa
prise en charge en fonction de l’évolution clinique de l’oiseau et cela sans masquer pendant une
durée trop importante les symptômes.
Par contre après l’intervention chirurgicale ou médicale le meloxicam est interessant puisqu’à ce
moment le confort de l’oiseau sur le long terme est essentiel afin que celui-ci reprenne les forces
nécessaires à son rétablissement.
5.2.5 Lubrification
Pour faciliter le glissement de l’oeuf, du gel lubrifiant ou de la vaseline peuvent être appliqués au
niveau du cloaque (Rosskopf et Woerpel, 1984). Évidemment cela ne va pas faire sortir l’oeuf tout
seul mais c’est une aide ne présentant pas de contre indication. Celle-ci mérite d’être tentée.
5.2.6 Ocytocine
De l’ocytocine peut être administrée à l’oiseau en l’absence de torsion de l’oviducte (Mentré, 2017)
à la dose de 3 à 5 UI/kg en intramusculaire (Sudhakara Reddy et Sivajothi, 2018). La prise peut être
répétée jusqu’à 3 fois à 30min d’intervalles mais si aucune réponse n’apparait alors il ne sert à rien
de poursuivre les injections.
L’ocytocine va permettre la mise en place de contractions utérines et l’ouverture du col utérin
(Bhatt, 2021).
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22 !5.2.7 Prostaglandines
En ce qui concerne l’utilisation de prostaglandines, il faut être prudent et mieux vaut ne pas en
utiliser que de les utiliser de manière inadéquate. En effet, il existe de nombreuses prostaglandines
différentes et les rôles de chacunes vont varier. Les PGF2æ ne doivent pas être utilisées puisqu’elles
vont provoquer des contractions utérines sans dilatation du sphincter utero-vaginal. Si celui-ci n’est
pas ouvert les contractions seront improductives et même délétères pour l’oiseau. Par contre, il
pourrait être interessant d’utiliser les PGE2 à la dose de 0,2mg/kg en application locale au niveau
du cloaque, cependant cette molécule n’est pas disponible à l’usage vétérinaire ni en Belgique, ni en
France (Mentré, 2017).
5.3 Gestion chirurgicale
Plusieurs interventions existent et celles-ci sont plus ou moins invasives. Elles vont être choisies en
fonction de l’état de l’oiseau, de la présentation et de la localisation de l’oeuf.
5.3.1 Taxis
L’intervention la moins invasive est de tenter de faire sortir l’oeuf par taxis. C’est à dire en
manipulant l’oeuf par palpation au travers de la cavité coelomique. Cela va permettre soit de
repositionner l’oeuf correctement soit de l’expulser (Rosskopf et Woerpel, 1984). Cette technique
demande une manipulation délicate car il ne faut pas endommager la coquille au risque de créer un
traumatisme voir une péritonite à jaune d’oeuf. De plus, il ne faut pas oublier que l’animal que l’on
tente de soulager est dans un état de stress important. Les manipulations doivent être réfléchies afin
de ne pas stresser l’oiseau d’avantage.
5.3.2 Ovocentèse
L’ovocentèse est une intervention un peu plus invasive mais régulièrement utilisée. Elle est a
favoriser lors d’absence ou de diminution de la production des fientes afin d’éviter l’apparition de
lésions rénales ou une obstruction digestive (Avanzi et Huynh, 2020).
Si l’état de l’oiseau le permet, il doit être anesthésié au gaz à l’aide d’Isoflurane. Il doit être stabilisé
avant l’intervention et la radiographie doit montrer un oeuf avec une paroi relativement fine afin
d’éviter des lésions utérines liées à la fragmentation de la coquille.
Pour réaliser cette intervention seule une aiguille 16 ou 18G ainsi qu’une seringue de 5 à 10mL sont
nécessaires. Dans certains cas l’intervention se fait de manière échoguidée mais si l’oeuf est
facilement mobilisable et qu’il est possible de le maintenir immobile entre les doigts cela n’est pas
toujours utile.
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