Mode d'emploi Microscope Confocal Leica SP8 - Inserm
←
→
Transcription du contenu de la page
Si votre navigateur ne rend pas la page correctement, lisez s'il vous plaît le contenu de la page ci-dessous
1 Plateau technique d'imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Mars 2013 Mise à jour : Mars 2021 Mode d'emploi Microscope Confocal Leica SP8 Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
2 SOMMAIRE 1. Allumage du système 3 2. Fonctionnement du Statif 3 2.1 Observation des échantillons aux oculaires 3 2.2 Contrôles manuels 4 2.3 Réglage de Koehler 4 3. Présentation du software 5 3.1 Présentation du menu Acquisition 5 3.2 Charger une configuration 5 3.3 Régler les paramètres pour l'acquisition 6 3.4 Acquisition de l'image 6 3.4.1 Réglage du Gain 6 3.4.2 Réglage de la puissance laser : 6 3.4.3 Comparaison d’intensité 7 3.4.4 Acquérir une image en transmission 7 4. Zoom 7 5. Echantillonnage spatial 7 6. Acquérir une pile d'images en z 8 6.1 Z-Compensation 9 6.2 Z-Compensation durant une acquisition séquentielle 9 6.2.1 Seq 2 canaux : 9 6.2.2 Seq 3/4 canaux : 10 7. Tiles Scan 11 7.1 Mark end Find 11 7.2 Pour faire de la mosaïque 11 8. Fin de manip 12 8.1 Sauvegarde 12 8.2 Extinction du système 12 9. Récapitulatif des séquences d’utilisation du SP8 13 Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
3 1. Allumage du système 1- Allumer la lampe à fluorescence 2- Allumer le contrôleur CTR6500 3- Mettre en position « ON » les 2 interrupteurs du pupitre sous le bureau A) Scanner Power B) Laser Power 4- Tourner la clé vers la droite (diode s’allume de couleur orange) 5- Si PC éteint, rallumer le PC : ouvrir la session « TCS user » 6- Sur le bureau, ouvrir le logiciel : LAS X 7- Lors du démarrage du logiciel, une première fenêtre apparait : Veillez à ce que le module STED et « Apply Customized User Settings » soit sur « OFF », puis cliquez sur « OK » 2. Fonctionnement du Statif 2.1 Observation des échantillons aux oculaires Trois objectifs sont présents sur le SP8: un 20X à sec (ON 0,5), un 40X à immersion à huile (ON 1,3) et un 63X à immersion à huile (ON 1,4). Choisir l'un ou l'autre via le logiciel. Vos lames doivent être propres. Sur le statif, choisissez le canal que vous souhaitez observer (1) (attention, 3 cubes sont disponibles pour la visualisation aux oculaires : Dapi, vert et rouge. Il n'y a pas de cubes pour le rouge lointain qui n'est pas visible aux yeux puis appuyez sur le bouton Shutter (2). Le statif bascule automatiquement sur les oculaires. Si cela n'est pas le cas, appuyez sur le bouton représentant un œil (3). Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
4 2.2 Contrôles manuels 5 Pour pouvoir voir en transmission, appuyez sur le bouton TL/RL (3) à gauche du statif. L'intensité lumineuse peut être réglée (2), ainsi que l'ouverture du diaphragme d'ouverture (1) et du diaphragme de champ (4). Vis micrométrique (5). Pour vous déplacer en x, y et z, utilisez le joystick. 1: Déplacement en y 2: Déplacement en x 3: Déplacement en z (mise au point) 4: Réglage de la vitesse de déplacement en z 5: Réglage de la vitesse de déplacement en xy. 2.3 Réglage de Koehler Le réglage de Koehler doit être fait lorsque l'on souhaite faire de la transmission afin d'obtenir une image de meilleure qualité. Il est à régler sur le plus faible grossissement puis à re-régler à chaque changement d'objectif. En mode oculaire : • Faire la mise au point sur l'échantillon • Fermer à fond (1) le diaphragme de champ • Régler (2) la hauteur du bloc condenseur jusqu'à voir les bords du diaphragme net • A l'aide des vis (3) positionnées en (4), centrer le diaphragme. • Elargir le diaphragme juste assez pour faire disparaître les bords (1) Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
5 3. Présentation du software L'interface du programme LasX se divise en deux parties principales : - A: Réglages des paramètres d'acquisition - B: Affichage de l'image A B 3.1 Présentation du menu Acquisition A. Différents modes d’acquisition peuvent y être choisis (XYZ, XYT, A 1 XYλ…). Le mode par défaut est XYZ Icône d’activation du mode séquentiel (1) pour acquérir plusieurs couleurs. B. Réglage des paramètres de l’image (taille de l’image en pixels, vitesse d’acquisition en Hz (400 Hz = 400 lignes par seconde), facteur de zoom, type de moyennage appliqué). B C. Réglages des conditions d’acquisition d’une série Z D. Séquences : choix de la séquence pré-configurée 3.2 Charger une configuration Dans Acquisition Mode (A), cliquez sur le bouton Seq (1). Un nouvel onglet apparaît : Sequential Scan (D). Cliquez sur le bouton Load C (2) et choisissez la configuration qui vous convient. Il y a alors une séquence par canal. Choisir le scan Between Lines permettra de voir simultanément tous les canaux Le basculement d'un canal à un autre pendant le balayage se fait toutes les 2 lignes lorsque le scan se fait en Between Line et tous les frames en Between Frame. D Attention : En Live en Between Line on peut voir et donc régler tous les canaux en même temps alors qu'en Between Frames, on ne voit qu'un seul Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
6 canal à la fois. 3.3 Régler les paramètres pour l'acquisition Allez dans Acquisition Mode. Taille de l'image : Choisissez la taille de votre image dans Format (classiquement on fait du 512 x 512 pixels). En cliquant sur le bouton Optimize xy format, on obtient la dimension en pixels idéale de l'image. Il ne sert à rien d'avoir un nombre de pixels plus important que le nombre optimal (cf échantillonnage spatial). Si un zoom est appliqué, il faut alors de nouveau cliquer sur ce bouton afin d'avoir la taille optimale de l'image. Vitesse d'acquisition : Plus la vitesse d'acquisition de l'image est lente, meilleur sera le rapport signal/ bruit. La vitesse habituellement choisie est de 600 Hz. Moyennage : Si le rapport signal/bruit n'est pas suffisant, on peut faire une moyenne. Avec un échantillon vivant, le mode ligne est le plus approprié. Direction : Afin de gagner du temps, acquérir l'image en balayage bidirectionnel en cliquant sur le bouton Bidirectional z. 3.4 Acquisition de l'image Pour chaque canal, les réglages doivent être faits afin que l'intensité des pixels les plus brillants soit la plus proche possible de la saturation sans l'atteindre. Pour cela, il faut jouer sur le gain du détecteur et la puissance du laser. Démarrez le scan en cliquant sur Live et se mettre en fausse couleur (les pixels saturés apparaissent en bleu et les pixels à zéro sont en vert) en cliquant sur le bouton en haut à gauche de l'image. Afin d'obtenir une bonne image, les pixels les brillants doivent être proches de la saturation sans l'atteindre. Pour cela, il faut régler le gain du détecteur et la puissance du laser correspondant. 3.4.1 Réglage du Gain Pour régler le gain du détecteur, jouez avec le bouton gauche de la barre de boutons de réglage. Jusqu'à 100% il n'y a pas d'ajout de bruit électronique. Pour sélectionner le détecteur à modifier, cliquez sur l'image correspondante (elle doit être entourée de pointillés blancs). 3.4.2 Réglage de la puissance laser : La puissance du laser se règle dans le logiciel. Pour sélectionner le laser à modifier, il faut sélectionner la séquence correspondante dans l’onglet Sequential Scan. Faire la même chose pour tous les autres canaux. Une fois les réglages réalisés, cliquez sur le bouton Start pour acquérir une image. Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
7 3.4.3 Comparaison d’intensité Si vous souhaitez faire une étude d'intensité sur vos images, faites d'abord vos réglages (laser, gain) sur l'échantillon le plus brillant et gardez ces paramètres pour acquérir les images suivantes. Ainsi, les autres échantillons ne seront pas saturés. De même, les améliorations d'images (contraste par exemple) doivent d'abord être faites sur l'image la plus brillante puis appliquer de la même manière sur les autres images. 3.4.4 Acquérir une image en transmission Pour acquérir en transmission, sélectionnez une configuration avec Trans. On peut voir que dans une séquence le PMT de la transmission est activé. La transmission est acquise simultanément avec un canal fluo: la source d'excitation (le laser) est donc commune et sa valeur est la même pour le canal fluo et pour le canal de la transmission. Il faut donc en premier régler la puissance laser sur la fluorescence et ensuite pour régler la transmission jouer uniquement sur le gain du PMT de la transmission. Avec la barre de boutons de réglage, réglez le gain du PMT de la transmission. 4. Zoom Vous pouvez directement zoomer sur la zone de votre choix en arrêtant le LIVE puis en cliquant sur Zoom in dans l'onglet XY. Encadrez ensuite sur l'image la zone à zoomer puis cliquer sur Start pour acquérir. Dans l'onglet XY, pouvez voir et changer vos paramètres de zoom dans Zoom factor. Il est aussi possible de dézoomer jusqu'à un facteur de 0,75 pour imager une plus grande surface. 5. Echantillonnage spatial 0.4 - La résolution dépend de l’objectif : r = - La taille du pixel est ajustable. Selon le théorème de Nyquist, l’échantillonnage idéal doit être de : r 2.3 Objectif 20X 40X 63X ON 0.8 1.3 1.4 r (à 543 nm) 271.5 nm 167 nm 155 nm Echantillonnage 118 nm 72.6 nm 67.5 nm idéal Taille du pixel 1,14 µm 361 nm (512x512) Zoom =1 Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
8 Taille du pixel 379 nm 120nm (512x512) Zoom=3 Taille du pixel 90 nm (512x512) Zoom=4 Taille du pixel 189 nm (512x512) Zoom=6 Taille du pixel 568 nm 180 nm (1024x1024) Zoom=1 Taille du pixel 284 nm 90 nm (1024x1024) Zoom=2 Taille du pixel 189 nm 60 nm (1024x1024) Zoom=3 - Si on sur-échantillonne trop, on use le fluorophore et on bleache, sans gagner en résolution qui est limitée par l’objectif. Quand je zoome, je sur-échantillonne. - Si on sous-échantillonne, on perd en résolution. Avec l'objectif 20X et en 512x512 il ne faut pas dépasser le zoom de 6. Avec l'objectif 63X et en 512x512 il ne faut pas dépasser le zoom de 4. 6. Acquérir une pile d'images en z Allez dans l'onglet Z-stack. On va ici fixer les limites haute et basse de la pile. Cliquez sur Live, déplacez-vous en Z à l'aide de la vis micrométrique et déterminez le premier et le dernier plan en cliquant sur Begin et End. Vous pouvez déterminez vous-même le nombre d'images à acquérir ou l'intervalle entre chaque image. Pour avoir un intervalle entre deux images qui respecte le théorème de Nyquist, sélectionnez System optimized. Afin de ne pas avoir de saturation, se mettre en fausse couleur et chercher pour chaque canal séparément en navigant en z s'il y a un plan plus lumineux que celui sur lequel les réglages ont été précédemment faits. Cliquez sur l’icône : START. Si vous ne souhaitez plus réaliser de Z-stack mais seulement acquérir une image dans un seul plan, cliquez sur le bouton représentant une poubelle. Cela effacera les bornes de votre Z-stack. Le bouton Capture Image permet aussi d'acquérir une image dans le plan actuel si un Z-stack est actif. Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
9 6.1 Z-Compensation Cette fonction de compensation peut être utilisée lors d’une acquisition d’un Z-Stack pour compenser les variations de brillance dans l’épaisseur de l’échantillon. Ceci peut se faire de 2 façons : - via l’intensité du laser (AOTF/EOM Gain/ MP Attenuation) - via le Detector Gain Ces méthodes peuvent être combinées l’une avec l’autre. 1 [begin] et 2 [end] correspondent aux bornes du Z-Stack quand « Z-compensation » a été choisi. 3 Les lignes horizontales représentent les positions du Z-stack qui serviront de points de support pour la Z- compensation. 4 La ligne en pointillée indique la position Z en cours 6.2 Z-Compensation durant une acquisition séquentielle 3 6.2.1 Seq 2 canaux : 1) Définir les bornes de la pile d’images : 4 2) Définir le mode par lequel la 2 séquence doit être effectuée : Between Lines, Between Frames ou Between Stacks. (1). 3) Cliquer « Live » puis sur « Z- compensation ». (2). 1 4) - Sélectionner le type de compensation souhaitée dans la boite de dialogue de la Z- compensation (3) AOTF/EOM Gain soit Detector Gain ou les deux combinés indispensable si l’on veut l’acquisition de la Transmission et donc régler le gain du T-PMT. Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
10 Nota Bene : Dans le mode « Between Lines sequential scan mode », la compensation peut uniquement se faire en utilisant AOTF/EOM Gain. Il est préférable d’utiliser la séquence « Between Stack ». 5) - Une fenêtre informe l’utilisateur que le mode de réglage de la Z-compensation est valide pour toutes les séquences. Cliquer OK pour confirmer. (4). 6) – Pour chaque séquence (canal) appliquer le % puissance laser en fonction de la position Z et cliquer sur « Add ». Faire cette manip autant que nécessaire. Puis passer à la 2e séquence. 7) – cliquer : START pour commencer l’acquisition séquentielle du Z-stack avec la compensation linéaire. 6.2.2 Seq 3/4 canaux : A partir de 3 canaux (1), la séquence de compensation peut uniquement se faire dans le mode « Between Lines » (2). 3 La Z-compensation ne pourra alors se faire que par l’AOTF/EOM Gain (3). 1 2 4 1. - Durant le Live, configurer les réglages pour la première séquence (premier canal). 2. - Cliquer sur la position de départ du Z [Begin] dans la boite de dialogue de la Z-compensation et appliquer cette position en cliquant Move To. Ensuite, ajuster le % puissance laser pour cette position. Cliquer « Add » pour appliquer les valeurs à cette position. 3. - Suivre la même procédure pour la position [End]. 4. - Par la suite, des positions supplémentaires au sein du Z-Stack peuvent être définies pour compensation en traversant l’échantillon et en ajoutant les valeurs de % modifiées pour la position correspondante en cliquant « Add » ; 5. – Rester en mode « LIVE » et passer sur la seconde séquence pour le deuxième canal. 6. - Assurez-vous que Seq.2 est actif dans la boite de dialogue Sequential Scan (bouton est rouge) 7. - Comme décrit à l’étape 2, configurez maintenant les réglages correspondant à la position [Begin] et à celle de [End] (et également pour les positions intermédiaires) pour la Z- compensation. Durant cette procédure, soyez sûr que vous avez adapté les valeurs introduites depuis la seq.1 aux critères pour la 2e séquence. 8. - Les positions intermédiaires pour la compensation peuvent être définies indépendamment pour chaque séquence. Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
11 9. - Suivre la même procédure pour les séquences supplémentaires. 10. - Une fois tous les réglages faits, cliquer START pour commencer l’acquisition séquentielle du Z-stack avec la compensation linéaire. 7. Tiles Scan Il faut initialiser la platine au démarrage du logiciel LAS X 1 pour pouvoir activer les icônes. 7.1 Mark end Find (Multipositions) (1) 1- Dans l’onglet Mark and Find experiment, définir les positions x,y,z avec l’icône « Mark pos » (2), cliquez + 2- Pour faire du Multi pos + Z stacks : a) Même Z-stack pour toutes les positions : cocher « same stack for all » (3) qui permet de garder la même épaisseur du stack pour toutes les positions choisies. L’épaisseur du stack peut être définie de 2 manières : - en « Begin/End » - en « Z around current » : définir l’intervalle b) Pour faire des Z-stacks différents sur chaque position : - décocher « same stack for all » - choisir les bornes “Begin/End” sur une position et cliquer sur “redefine stack”. 2 - aller sur la position suivante et redéfinir « Begin/End » et cliquer sur « redefine stack ». 7.2 Pour faire de la mosaïque (Tile Scan) (4) 4 - définir le nombre de tuiles (2x2 ou 2x3 etc…) - activer « auto stitching » et « smooth » (5) 3 5 Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
12 8. Fin de manip 8.1 Sauvegarde Allez dans Experiments. Les images ont été automatiquement placées dans une expérience (Project). Elles peuvent être renommées en faisant un clic droit dessus puis Rename. Puis sauvez l'Experiment en faisant un clic droit puis Save. Enregistrez le « project » dans le dossier « données utilisateurs » qui se trouve sur le bureau : >>> CPTP N° équipe. Toute image acquise sur le SP8 doit être sauvegardée en format .lif afin de conserver les méta données. Vous pouvez ensuite sauvegarder en .tif mais pas en Jpeg (qui compresse donc perd des informations). 8.2 Extinction du système Lorsque vous êtes de dernier utilisateur de la journée : 1- Nettoyer l’objectif 63X ou 40X à huile avec un Kimtech et de l’alcool 2- Baisser la tourelle d’objectifs 3- Eteindre les lasers dans le logiciel : mettre sur « OFF » chaque laser allumé A) Cliquer sur le + pour ouvrir la fenêtre des lasers B) Mettre chaque laser sur « OFF » A B 4- Sauvegarder vos acquisitions 5- Fermer le logiciel NE PAS ETEINDRE L’ORDINATEUR 6- Sous la table, tourner la clé vers la gauche (le voyant lumineux orange s’éteint) Mettre les 2 interrupteurs sur « OFF » : Laser Power et Scanner Power 7- Eteindre le contrôleur CTR 6500 8- Eteindre la lampe à fluorescence 9- Mettre la housse de protection sur le microscope 10- Bien refermer la porte de la pièce en partant Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
13 Rappels Nettoyez les objectifs à immersion utilisés avec un Kimtech et de l'alcool à la fin de la séance. Récupérez le plus rapidement possible les données après acquisitions (nettoyage mensuel de l'ordinateur). Si un problème se produit, remplir les fiches « anomalie » présentes à côté de l'ordinateur et signaler le problème à un responsable. 9. Récapitulatif des séquences d’utilisation du SP8 1- Allumer le système : Eteindre PC (pas forcément nécessaire), puis allumer selon la séquence: 1) lampe fluo, 2) contrôleur, 3) banc lasers, 4) allumer PC, 5) ouvrir le logiciel LASX : 6) onglet Z-Stack : choisir « Z-Wide », 7) choisir l’objectif (20X ou 63X). Voir fiche sur le mur. 2- Positionner son échantillon sur le porte-objet de la platine du microscope et observer aux oculaires 3- Acquisition de son (ses) échantillon(s) via Confocal : charger une configuration ou rappeler une configuration depuis une acquisition précédente. Cocher l’onglet « Bidirectionnel » Faire les réglages : plan focal/ saturation ; Régler paramètres d’acquisition : format image ; scan speed ; moyennage 4- Dans l’onglet « Project » : donner un nom à l’experiment = project. Nommer ses différentes acquisitions. 5- Sauvegarder l’ « Experiment » = « Project » dans le fichier « Données utilisateurs » 6- fin de manip : nettoyer l’objectif, abaisser la tourelle avec les objectifs et éventuellement éteindre le système. Voir fiche sur le mur. 7- Noter son passage sur le registre Plateau technique d’imagerie cellulaire d’Infinity-Purpan Sophie Allart - sophie.allart@inserm.fr – Simon Lachambre – simon.lachambre@inserm.fr Tél : 05. 62. 74. 45. 78 05. 31. 54. 79. 01
Vous pouvez aussi lire