COURS D'ASSISTANT VETERINAIRE

 
COURS D'ASSISTANT VETERINAIRE
COURS D'ASSISTANT

   VETERINAIRE

   Auteur: COUNIOT Yves
COURS D'ASSISTANT VETERINAIRE
Ce cours est publié par

Centre de Formation à Distance

Mechelsesteenweg 102

2018 Anvers

Copyright

© Yves COUNIOT

© CFD, Mechelsesteenweg 102, 2018 Anvers

Tous droits réservés. Aucune partie de cette publication ne peut être reproduite, stockée
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Malgré tous les soins apportés à la composition du texte, ni l’auteur, ni l’éditeur, ni le CFD
ne peuvent être rendus responsables du dommage qui pourrait résulter directement ou
indirectement d’une erreur qui pourrait figurer dans cette édition. Toutes les informations
dans ce cours le sont à titre informatif et ne donnent qu’une idée des questions posées
lors de l’examen.

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Table des matières

1     L'assistant vétérinaire et la clinique

    1.1.   Introduction

    1.2.   La clinique

      1.2.1      La salle d'attente et bureau de réception

      1.2.2      La zone de bureau

      1.2.3      La salle de consultation

      1.2.4      La zone de préparation

      1.2.5      La salle de chirurgie

           -     Préparation du matériel chirurgical:

           -    Pendant l'opération :

           -     Après l'opération :

      1.2.6      La salle de radiologie et le laboratoire

      1.2.7      La Pharmacie

      1.2.8      La salle des déchets

      1.2.9      La salle d'hospitalisation ou chenil

           Mais qu'est-ce qu'une réelle urgence?

2     L'ASV et la pratique

    2.1.   La salle d'attente et la réception.

      2.1.1      L'accueil téléphonique

      2.1.2      Le planning

      2.1.3      La Pharmacie et le registre des médicaments

           La chaîne de froid

           Le registre des médicaments

      2.1.4      Les déchets , stockage et élimination.

    2.2.   La Consultation

      2.2.1      La consultation proprement dite.

           Symptômes tirés du malade lui-même.

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Les renseignements tirés du maître de l'animal - 'E.R.S.A.T.E.R.M.D.S'.:

           Les renseignements tirés de l'examen clinique proprement dit:

           Classification des symptômes:

           Les types de diagnostics

           Le pronostic

           Le traitement

    2.3.   La température.

    2.4.   La fièvre

    2.5.   L'hypothermie générale

3     La contention

           Préparation du matériel de prélèvements sanguins.

    3.1.   Quelques manipulations courantes:

    3.2. Contention pour prélèvement sanguin dans la céphalique chez le chat et chez le
    chien

    3.3.   Contention pour prélèvement sanguin dans la jugulaire

    3.4.   Contention pour une manipulation sécuritaire d'un chien 5agressif

    3.5.   La contention du chat

           Cas particulier : contention pour prélèvement sanguin dans la jugulaire du chat

    3.6.   Mode d’emploi de la gestion du chat agressif en consultation.

4     La vaccination

    4.1.   La vaccination

    4.2.   Le vaccin

      4.2.1      Vaccin vivant

      4.2.2      Vaccins homologues et hétérologues, et 'génétiquement modifiés'

      4.2.3      Vaccins tués

      4.2.4      Quelle est la différence entre ces deux types de vaccins?

      4.2.5      Plan de vaccination d'un jeune animal

           NB : Quelques petites particularités

           Quelques bonnes pratiques de vaccination
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4.3.   Identification de l'animal

      4.3.1      Le tatouage

      4.3.2      La puce ou microchip

           Que faire en cas de perte de l’ animal?

           Formalités administratives lors de l'identification

5     Le laboratoire

    5.1.   L'analyse d'urine

      5.1.1      Vidange manuelle de la vessie

      5.1.2      Le cathétérisme

      5.1.3      Cystocenthèse

      5.1.4      La miction volontaire

      5.1.5      Conditions de récolte et de stockage du prélèvement

      5.1.6      Constitution de l’urine

           A. production et propriétés

           B. Composition

      5.1.7      Caractéristiques chimiques de l'urine

           Analyse microscopique de l'urine

           Analyse macroscopique de l'urine au cabinet

      5.1.8      UTILISATION DE BANDELETTES URINAIRES

           Utilisation de la bandelette

    5.2.   Hématalogie ou analyse sanguine

      5.2.1      L'examen hématologique en pratique

      5.2.2      Frottis sanguin

           * Préparation et coloration du frottis sanguin

           * Examen systématique du frottis sanguin

           * Technique de coloration au May-Grünwald-Giemsa

           a) Protocole normal:

           b) Protocole simplifié:

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5.2.3      La composition du sang

           A.    Le plasma

           - L'albumine:

           - Les globulines:

           - Le fibrinogène:

           - Les autres solutés du sang :

           B. Les éléments figurés du sang

           - Les globules rouges :

           - Les globules blancs :

           - Les granulocytes :

           - Les agranulocytes :

           - Les plaquettes :

      5.2.4      Biochimie sanguine au cabinet (avantages, inconvénients)

           L'analyse de sang dans la clinique

           Qualité des résultats d’analyse

           Conditions d’utilisation de l’équipement

           Intervalles de référence

           Coûts des analyses par le cabinet vétérinaire

           Compte-rendu et gestion des résultats d’analyses

6     Analyse des matières fécales

    6.1.   Introduction

    6.2.   Analyse macroscopique

      6.2.1      La quantité

      6.2.2      La couleur

      6.2.3      L'odeur

      6.2.4      L'aspect

    6.3.   Analyse microscopique

      6.3.1      Introduction

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6.3.2      Le prélèvement des matières fécales

7     Le système cutané (peau, poils)

    7.1.   Introduction

    7.2.   Grattage cutané

           Technique

           Test du Scotch-Tape

    7.3.   Prélèvements de poils

      7.3.1      Lampe de Wood

      7.3.2      Examen microscopique des poils

      7.3.3      La mise en culture ou mycologie

           Utilisation du kit

8     La Radiologie

    8.1.   Matériel présent dans une salle de radiologie

      8.1.1      L'appareil radio

           L'écran renforçateur

           Les films de radiographiques

           La chambre noire

           Le développement

    8.2.   Examen des radiographies

      8.2.1      Terminologie

           Pour l'abdomen

           Pour le thorax

           Pour les membres:

      8.2.2      Le stockage des clichés

      8.2.3      Faire une radio en pratique

           Les moyens de protection:

      8.2.4      Les erreurs techniques fréquentes:

    8.3.   Echographie

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9     Anatomie

    9.1.   Introduction

    9.2.   L'appareil locomoteur

      9.2.1      Le squelette

      9.2.2      Colonne vertébrale

      9.2.3      Les membres

           Le membre thoracique

           L'épaule

           Le bras

           L'avant bras

           Le carpe (ou genou)

           L'extrémité digitée du membre antérieur

           Le membre postérieur

      9.2.4      les articulations

      9.2.5      Les muscles

      9.2.6      La fonction locomotrice

           Les os

           La vascularisation de l'os

           Les articulations

           Les extrémités osseuses

           Le cartilage

      9.2.7      Les fonctions physiologiques de l'appareil locomoteur du chien et du chat.

           Le squelette et la charpente du chien

           Les différents segments du squelette et de l’os

           La locomotion proprement dite

           La synoviale articulaire

           La capsule articulaire et des ligaments

10         Le coeur et le système respiratoire

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10.1.        Introduction

     10.1.1      L'appareil respiratoire supérieur

     10.1.2      L'appareil respiratoire inférieur

     10.1.3      Physiologie de la respiration

     10.1.4      La circulation

     10.1.5      Le coeur

     10.1.6      Veine

     10.1.7      Les artères

     10.1.8      Physiologie de l’appareil circulatoire

     10.1.9      Les vaisseaux lymphatiques

     10.1.10     La circulation lymphatique

11       PHYSIOLOGIE DE LA PEAU

 11.1.        LES STRUCTURES CUTANEES ET LEURS FONCTIONS

     11.1.1      Epiderme

     11.1.2      Derme et tissu sous-cutané

 11.2.        Les structures annexes

     11.2.1      Les poils

     11.2.2      Les glandes

 11.3.        Irrigation sanguine et innervation

 11.4.        Les rôles de la peau

12       La digestion

 12.1.        L'absorption des nutriments

 12.2.        L'évacuation des matières fiscales

13       LES DOMMAGES TRAUMATIQUES DES OS ET ARTICULATIONS

 13.1.        LES LESIONS MECANIQUES

     13.1.1      L'ENTORSE

     13.1.2      LA LUXATION

     13.1.3      LES FRACTURES

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Nomenclature des fractures

         Complications

 13.2.        ETUDE DE QUELQUES LUXATIONS PARTICULIERES

     13.2.1      Luxation du coude

     13.2.2      Luxation sacro-iliaque

     13.2.3      Luxation coxo-fémorale

         Test des 3 bosses

     13.2.4      Luxation de la rotule

     13.2.5      Les corps étrangers intra-articulaires

 13.3.        Les lésions inflammatoires de l'articulation: les arthrites

     13.3.1      L'arthrite aiguë close

     13.3.2      Arthrite aiguë ouverte, suppurée

 13.4.        Lésions dégénératives : l'arthrose

 13.5.        L'ankylose

 13.6.        Lésions des articulations du rachis

     13.6.1      Lésions inflammatoires : spondylarthrite

     13.6.2      Lésions dégénératives : spondylarthrose déformante

     13.6.3      Hernie discale

14       Physiologie du système reproducteur

 14.1.        Différenciation sexuelle

     14.1.1      Physiologie de l'appareil génital femelle

     14.1.2      Techniques d'interruption de l'activité sexuelle

 14.2.        Physiologie de l'appareil génital mal

15       La chirurgie

 15.1.        Matériel

 15.2.        Préparation

 15.3.        L’ASV en salle de chirurgie

16       Les organes digestifs

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16.1.        Bouche

 16.2.        Estomac

 16.3.        Intestin(s)

 16.4.        Foie

 16.5.        Pancréas

 16.6.        Physiologie de la digestion

 16.7.        La rate

 16.8.        Les reins

 16.9.        Les glandes endocrines

     16.9.1      Hypophyse

     16.9.2      Thyroïde

     16.9.3      Les glandes surrénales

     16.9.4      Le pancréas

17       Comportement ethologique du chien et du chat

 17.1.        Le chien

 17.2.        Le chat

 17.3.        L’agressivité

18       Répertoire des maladies héréditaires du chien et du chat

19       Eléments de microbiologie

 19.1.        Les bactéries

 19.2.        Les virus

 19.3.        Les levures, les champignons et les protozoaires

 19.4.        Les parasites les plus fréquents

 19.5.        Ectoparasites

 19.6.        Endoparasites

20       Les différentes classes de médicaments

21       Pathologies les plus fréquemment rencontrées en pratique

 21.1.        Maladies de la cavité buccale

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21.2.     Maladies de l’œil

 21.3.     Maladies de l’oreille

22       La vaccination : les différentes valences

 22.1.     Chez le chien

 22.2.     Chez le chat

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Introduction

Présentation du formateur

Diplômé en Médecine Vétérinaire en 1987 de la faculté de Médecine Vétérinaire de Liège
(Cureghem), je me suis installé en tant que praticien vétérinaire dans le Brabant Wallon
en 1989 après avoir travaillé deux années dans un cabinet vétérinaire en France où l'ASV
était....la femme du confrère.

De 1989 à 1996 j'ai pratiqué la médecine rurale mixte à prédominance canine, pour
finalement me développer exclusivement dans la médecine des animaux de compagnie.

En 1995, j'ai suivi la formation en orthopédie générale,           complétée en 1996, par la
technique des fixateurs externes. J'ai également approché l'homéopathie et la
phytothérapie dans ma pratique quotidienne et je suis actuellement des cours de micro-
immunothérapie       ,   persuadé      que   ces   différentes   médecines   alternatives   sont
complémentaires à la médecine vétérinaire traditionnelle.

En me basant sur ma pratique quotidienne et mon expérience vétérinaire, j'ai conçu ce
cours dans le but de vous offrir une base de compétences solides pour que vous
deveniez un assistant efficace et proactif, un collaborateur privilégié et indispensable qui
occupera de plus en plus une place prépondérante dans le cabinet vétérinaire qui vous
accueillera . Autrefois méfiant quant au rôle à jouer par les assistants, les praticiens
vétérinaires sont aujourd'hui conscients de l'utilité de ceux-ci au sein de leur infrastructure
tant au niveau de l'accueil, de la réception, de la vente, des tâches administratives et de
l'assistance en salle d'opération. Il est clair aujourd'hui que travailler avec un assistant
vétérinaire, c'est pouvoir se concentrer au mieux sur les actes vétérinaires et donc sur le
confort et le bien-être de l'animal.

Vous êtes donc une clé essentielle indispensable au développement de la clinique et à la
fidélisation de celle-ci.

Dr COUNIOT Yves, DVM

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Quelques instructions

Comment puis-je envoyer mes tâches?

Dans le cours vous trouvez plusieurs exercices et tâches. Souvent vous pouvez trouver
les solutions sur la page de l’étudiant. Si vous avez toutefois des questions ou si vous
souhaitiez un feed-back, vous pouvez envoyer un courriel ou courrier à votre professeur:

A. Envoyer des courriers:

1. Dès que vous avez fini une ou plusieurs tâches, vous pouvez les envoyer par courrier.

2. Il vous est conseillé de remettre une photocopie pour toute demande et de garder
toujours l'original.

3. N’oubliez pas de mentionner votre nom, prénom, numéro d’étudiant et adresse.

4. Postez vos tâches accompagnées d'une enveloppe de retour affranchie à l'adresse
suivante: CFD, Mechelsesteenweg 102, 2018 Anvers

B. Envoyer des courriels;

1. Dès que vous avez fini une ou plusieurs tâches, vous pouvez les envoyer par courriel.

2. Mentionnez toujours votre nom, prénom et numéro d’étudiant.

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Comment puis-je me connecter à la page de l’étudiant?

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Attention, les infos sur la page de l’étudiant sont mises à jour régulièrement. N’hésitez
donc pas à la consulter!

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Comment puis-je passer l’examen?

Si vous avez étudié l’ensemble du cours et si vous avez renvoyé tous les exercices et
tâches, vous pouvez passer l’examen. Cela peut se faire soit à Anvers, Gand ou Hasselt
pendant les heures d’ouverture des centres. Veuillez fixer un rendez-vous au plus tard
deux semaines avant l’examen.

Vous pouvez fixer un rendez-vous au numéro 03/292.33.36 ou vous pouvez renvoyer le
formulaire d’inscription à la page suivante au secrétariat central, CFD, Mechelsesteenweg
102, 2018 Anvers, info@formationadistance.be.

Attention: Le rendez-vous n’est définitif qu’après confirmation. N’oubliez donc pas de
mentionner votre adresse e-mail et votre numéro de téléphone, afin que nous puissions
vous répondre dans les meilleurs délais.

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Adresse e-mail

Veuillez renvoyer ce formulaire au plus tard deux semaines avant l’examen au secrétariat
central, CFD, Mechelsesteenweg 102, 2018 Anvers, info@formationadistance.be. Vous
pouvez également fixer un rendez-vous par téléphone au numéro 03/292.33.36.

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Comment puis-je faire un stage?

Pour maîtriser la pratique, vous pouvez faire un stage près de chez vous. Ce stage n’est
pas obligatoire, mais il est vivement conseillé. C’est une bonne expérience qui vous
permettra de trouver plus facilement un travail. Vous trouvez, ci-dessous, un exemple
d’une convention de stage. Vous pouvez vous adresser au secrétariat pour obtenir les
documents nécessaires.

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3       La contention
    Dans la profession, une maxime dit: 'La contention d’un animal est la moitié de la
    Médecine vétérinaire'. Nous allons donc voir dans cette partie différentes contentions
    manuelles, avec ou sans accessoires, régulièrement utilisées souvent à des fins biens
    spécifiques.

    Tout d'abord, une règle d'or avant toute manipulation est de préparer votre matériel avant
    de manipuler votre animal ! Je vais donc en parler avant de vous montrer les différentes
    contentions.

    Préparation du matériel de prélèvements sanguins.

    Le dispositif le plus courant utilisé est le système 'vacutainer®'. Il doit être monté de la
    façon suivante:

    -   L'aiguille: la partie transparente est délicatement enlevée de manière à faire
        apparaître une aiguille recouverte d'un petit caoutchouc

    -   Le support ou 'barrilet' est la partie qui permet de visser l'aiguille et d'offrir ainsi un
        guide lors de l'introduction de l'aiguille dans la veine.

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-   Les tubes ont des couleurs différentes de bouchon. Le choix du tube est dépendant
    de la couleur du capuchon en fonction des analyses demandées. En clinique, les 3
    tubes les plus utilisés sont:

                -   le rouge ou tube sec sans coagulant pour les sérologies

                -   le tube mauve avec un anticoagulant pour l'analyse de la formule
                    sanguine

                -   et le gris également avec anticoagulant pour la recherche du taux de
                    sucre (glycémie).

Les tubes avec anticoagulant qu'il soient liquides (violet) ou en poudre (gris) doivent être
brassés délicatement mais immédiatement en les roulant dans la paume des mains

-   Saisir le capuchon bleu de l'aiguille à sa base et on le dévisse dans le sens opposé
    des aiguilles d'une montre

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-   Enlever le capuchon bleu opaque de l'aiguille, une fois que celle-ci est fixée au barillet
     et s'assurer que le biseau est face vers nous c'est-à-dire face supérieure.

 -   Le matériel est prêt à être utilisé!

3.1. Quelques manipulations courantes:
 1) chien assis sur la table : maintenir le chien en plaçant une main sur sa fesse et de
 l’autre main, entourer le poitrail de l’animal. Utilisée pour une présentation de l’animal en
 vue de l’inspection de la tête et des yeux

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2) Debout sur la table : si l’animal ne veut pas rester immobile, soutenir d’une main son
menton et de l’autre, le ventre dans sa région postérieure. Position utilisée pour
l’auscultation et la palpation

3) Lever un chien pour le monter sur la table : veiller à soulager son dos et à se soulever
avec le chien en s’aidant de ses jambes, dos bien droit. Veiller à passer une main entre
les pattes avant de l’animal et l’autre qui soutient son arrière-train en prenant la
précaution de placer la queue entre les pattes arrière.

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4) Décubitus sternal : en appuyant sur le dessus du bas du dos de l’animal, on le force à
se coucher en position du ‘sphynx’. Utile pour le prélèvement de sang à la veine brachiale
(cfr plus loin).

5) Debout sur le sol : position d’attente pysilogique de l’animal. Utilisée pour la palpation
abdominale surtout quand le chien est volumineux ou encore pour l’inspection de la
respiration

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6) Décubitus latéral : on force l’animal à se coucher sur un de ses côtés, utilisée pour la
 prise de température chez les grands animaux et pour la manipulation des membres

3.2. Contention pour prélèvement sanguin dans la céphalique chez
 le chat et chez le chien :
 La veine céphalique se situe sur la face antérieure de la patte avant du chat et du chien.
 S'il est vrai que les prélèvements sanguins chez le chat se font habituellement dans la
 veine jugulaire et chez le chien dans la veine céphalique, cette technique est également
 applicable chez un chat extrêmement calme !

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-   Comme précédemment, la toute première chose sera de préparer son matériel. Avec
    un chat, il sera plus qu'important d'assurer une excellente contention d'autant que le
    chat est un animal vif et surprenant.

-   On peut se faciliter la tâche en utilisant un garrot.

-   Présenter la patte de l'animal en saisissant le membre antérieur à hauteur du coude
    et, à l’aide de votre pouce, aller chercher l'intérieur du coude.

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-   Ensuite, effectuer un mouvement de rotation de la peau tout en exerçant une pression
    avec son pouce sur la veine de manière à la faire gonfler. A la fin de ce mouvement,
    placer la pointe du coude de l’animal dans le creux de votre paume tout en continuant
    votre pression sur la veine.

-   Le vétérinaire peut alors introduire l'aiguille, biseau vers le haut en introduisant celle-ci
    du côté interne de la patte, la veine étant retenue de l'autre côté par le pouce qui
    empêche ainsi la veine de reculer sous l'aiguille.

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-   il ne reste plus qu’à prélever le sang dans les tubes !

  REMARQUE : Le principe de la prise de sang à la veine céphalique chez le chien et le
  chat est le même principe qu'on applique lors de la pose d'un cathéter.

3.3. Contention pour prélèvement sanguin dans la jugulaire :
  -   Dans le cas du prélèvement dans la jugulaire d'un chien/chat, il arrive qu'on doive
      courber l'aiguille afin de se donner un meilleur angle et de pouvoir s'introduire plus
      facilement dans la veine

  -   L’animal peut rester sur la table en le tenant comme sur la photo ou si le chien est
      gros se placer sur le sol

  -   Pour gonfler la jugulaire d'un chien/chat, on presse à la base de la jugulaire (gouttière
      naturelle dans laquelle se réfugie la veine jugulaire) à un endroit qui se situe au-
      dessus de la pointe de l'épaule.

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-   Il arrive qu'on doive déplacer notre pouce latéralement ou médialement si celle-ci n'est
    pas suffisamment visible ; de toute façon, le pouce est pacé de façon à exercer une
    'contre-pression, une résisitance ' au moment où l'on introduit l'aiguille dans la veine.

-   Une fois la compression effectuée, la jugulaire se gonfle, et on la voit apparaître,
    parallèle à la trachée, à quelques millimètres de celle-ci. Pour favoriser la visibilité de
    la veine, il est parfois nécessaire de raser l'endroit où l'on va pratiquer la prise de
    sang. A cette étape de la prise de sang, on désinfecte et mouille le pelage d'alcool, en

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plus ou moins grande quantité selon la longueur du poil ! Il est important de bien lisser
    le pelage mouillé à fin d'aider la visualisation de la veine gonflée.

-   Une fois la veine bien visible, on introduit l'aiguille. Pour un préleveur gaucher, l'aide
    présente la veine jugulaire gauche (c’est donc l’inverse du prélèvement sanguin à la
    patte – rappel : vétérinaire gauche, patte gauche !). L'opérateur presse la base avec le
    pouce droite et introduit l'aiguille à l'aide de la main gauche.

-   On introduit l'aiguille de telle sorte que le biseau soit tourné vers le haut.

-   On ressent très nettement après une résistance de la peau la pénétration de l’aiguille
    dans la veine. On place alors délicatement le tube à l'intérieur du barillet, en
    s'assurant de bouger le moins possible de manière à ne pas sortir de la veine. Pour ce
    faire, on maintient le barillet entre le pouce et l'index tout en « s'appuyant » sur le cou
    de l'animal ; si tout se passe bien, le sang pénètre alors sous l'effet du 'sous-vide' du
    tube.

-   Une fois le tube introduit dans le barillet et le sang y pénétrant, la main droite va
    reprendre sa pression à la base du jugulaire afin que celle-ci soit bien gonflée.

NB : Si le sang ne coule pas ou coule mais difficilement, il ne faut pas hésiter à déplacer
l'aiguille délicatement en faisant des mouvements de va-et-vient de gauche vers la droite
afin de favoriser l'écoulement du sang MAIS, il faut faire attention à ne pas léser la veine
lors de cette opération, ce qui aurait pour effet de provoquer une douleur à l'animal et par
la suite de favoriser une hémorragie sous-cutanée.

-   Une fois le tube bien rempli, nous enlevons le tube en faisant attention de ne pas faire
    ressortir l'aiguille de la veine . En général, on saisit le tube de la main qui faisait
    pression sur la veine et on recommence l'opération telle que décrite ci-dessus.

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3.4. Contention pour une manipulation sécuritaire d'un chien
 agressif.
 Face à un chien agressif, il est bon de le neutraliser en l'empêchant de mordre, soit en
 utilisant une muselière, soit à l’aide des liens larges.

 -   La muselière : la plus pratique et la mieux supportée est la muselière en nylon ; elle
     permet à l'animal de passer la langue, est légère et peu traumatisante.

 -   Les liens larges : ce peut être une ceinture de peignoir, une lanière en tissus d'au-
     moins 2cm de large …

 -   Préparer une boucle au moyen d'un noeud simple correspondant au diamètre du
     museau du chien

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-   on passe le lien autour du museau du chien (noeud au-dessus du museau, face
    supérieure) et on croise sous la mâchoire les 2 chefs sans faire de noeuds !

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-   on passe alors les 2 chefs derrière les oreilles du chien et on effectue d'abord un
    noeud plat ou noeud simple et ensuite une cocarde facile à défaire. Pour le retrait, il
    suffira de tirer la cocarde et le chien fera le reste !

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3.5. La contention du chat
  Les principes sont les mêmes si ce n’est qu’il faut toujours se méfier des réactions du
  chat, souvent très vives et parfois violentes : il faut donc le maintenir fermement mais
  sans violence !

  1) Transport sécuritaire

  2) Contention pour manipulations au niveau des oreilles

  3) Contention pour prélèvement sanguin dans la céphalique

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4) Décubitus latéral

Cas particulier : contention pour prélèvement sanguin dans la jugulaire du chat :

Celle-ci ressemble fort à la prise de sang de la jugulaire du chien si ce n'est que la taille
de l'animal a quand même une petite influence.

-   tout comme pour le chien, avant même d'aller chercher l'animal et il faut préparer son
    matériel, éventuellement raser la région (c'est même plus que conseillé chez le chat)
    et nettoyer la zone à l'alcool (outre, l'aspect désinfection, l'alcool va en outre favoriser
    le gonflement de la veine).

-   Les repères anatomiques sont les mêmes. Par contre, courber l'aiguille est
    indispensable chez le chat : on courbera systématiquement l'aiguille pour s'introduire
    dans la veine.

-   Pour faire gonfler la jugulaire, on va presser celle-ci à sa base

-   Si l'animal n'est pas rasé, une grande quantité d'alcool pourra être nécessaire afin de
    lisser le poil et introduire l'aiguille , biseau vers le haut.

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-   Une petite particularité chez le chat : au retrait de l'aiguille, il est conseillé de presser
      le point de sortie de l’aiguille entre le pouce et l'index afin d'empêcher une fuite de
      sang de la veine qui a été ponctionnée.

  NB : j'ai décrit ici le prélèvement le plus fréquemment utilisé mais, sachez que ceux-ci
  peuvent également être effectués à la seringue ; dans ce cas, dès que le sang a été
  récolté dans la seringue, il faut immédiatement le transférer sans attendre dans le tube
  sous-vide sous risque de le voir coaguler dans la séringue !

3.6. Mode d’emploi de la gestion du chat agressif en consultation.
  Le chat est un animal déconcertant, capable de passer du calme à la furie au cours d’une
  même consultation.

  Une bonne contention est donc indispensable. La manipulation d’un chat “difficile” peut
  s’effectuer par des actes doux et l’utilisation de phéromones. Mais l’indication de certains
  soins ou prélèvements, notamment les prises de sang, rendent nécessaire le recours à
  des moyens de contention plus contraignants pour l’animal. Il convient qu’une contention
  soit sûre, efficace et non traumatisante pour le chat. Elle doit permettre de réaliser le
  maximum de soins et préserver le manipulateur du danger, en le mettant à l’abri des
  griffades et morsures.

  L’anesthésie générale est fiable, mais sa réalisation sans contention efficace est parfois
  impossible et les propriétaires apprécient que le vétérinaire n’y fasse pas appel. En outre,
  elle n’est pas recommandée chez des animaux débilités et faibles.de plus, selon le type
  d'anesthésiques utilisés, la prise de sang ne doit pas traîner à être faite car cela pourrait
  provoquer une augmentation de la glycémie.

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Face à un chat peu coopératif, il ne faut pas oublier que les feulements, grognements, et
autres vocalises ont pour but d’éviter de griffer et de mordre celui qui se trouve de l’autre
côté de la table de consultation…

Manipuler un chat terrorisé peut se révéler moins difficile qu'on ne le pense à condition de
minimiser les signaux qu’il interprète comme des menaces (par exemple, dire « chut »
crée un sifflement inquiétant qui lui rappelle un congénère prêt à se battre).

-   Utilisation d’une serviette éponge ou du sac de contention

Utilisée comme barrière de protection, la serviette éponge doit cependant lui laisser
autant de contact que possible avec le sol (ou la table) et de garder sa tête à l’opposé de
celle du praticien. L’idéal est de s’asseoir par terre et de le maintenir enveloppé dans une
serviette entre ses jambes, ce qui procure une étreinte ferme et rassurante.

-   Pour réaliser une prise de sang, le meilleur compromis pour le chat et l’assistant est
    d’envelopper la tête, le tronc et les membres antérieurs dans une serviette et de
    prélever le sang dans la veine saphène médiale, l’animal étant placé en décubitus
    latéral.

À côté de cela il existe le d'autres techniques de contention qui nécessite un outillage
spécifique et ce, principalement pour l'espèce féline.

-   Les gants de contention protègent les mains. La finesse et la souplesse de leur cuir
    permettent un bon maintien, jusqu’à une certaine limite cependant. Leur résistance
    protège également des griffades et des morsures. Toutefois, la personne qui tient le
    chat ne peut pas effectuer en même temps les soins nécessaires (seules les injections
    sont réalisables). Les gants peuvent aussi servir à attraper l’animal qui tente de
    s’enfuir sans craindre ses attaques. Un inconvénient majeur est que le chat en

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gardera un souvenir d’expérience négative et sera encore plus difficile à manipuler la
    prochaine fois !

-   L’application d’une muselière spécialement étudiée pour l’espèce féline permet de
    manipuler un animal apeuré et hyperactif. Apposée sur les yeux et la gueule, elle suffit
    parfois à rassurer le chat en lui ôtant la vision et met le praticien à l’abri des morsures
    en limitant les réactions de défense. Toutefois, la pose d’une muselière est
    particulièrement difficile chez un chat craintif, surtout en cours de consultation. Par
    ailleurs, elle ne protège pas des griffades et ne garantit pas de pouvoir opérer sans
    aide.

-   La pince à contention, en aluminium, permet de rattraper un animal et de le maintenir.
    Ses mords sont recouverts de plastique pour minimiser les traumatismes qu’elle
    pourrait occasionner. D’une longueur de 70 cm, elle tient le chat “récalcitrant” à
    distance mais ne permet pas les manipulations d'usage, elle sert uniquement à
    l'attraper.

Le sac de contention est une autre solution à envisager. Il autorise l’administration de
presque tous les soins (prise de sang, coupe de griffes, injections, examen des yeux et
des oreilles, etc). En nylon, solide et résistant aux griffes, il laisse passer les rayons X.
Deux zips arrière permettent au praticien d’accéder aux membres. Il se ferme rapidement
au niveau de l’encolure grâce à un velcro et s’ouvre complètement sur le dos par un zip à
double sens.

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Aucune méthode de contention féline n’est idéale, douce, non traumatisante et
facile à mettre en œuvre en présence du propriétaire et sans aucune aide. Cependant,
selon la situation et le caractère des animaux à traiter, plusieurs solutions sont
disponibles. En outre, mieux vaut privilégier le matériel spécialement conçu et adapté
plutôt que d’opter pour une contention “de fortune” qui n’offre pas la même sécurité qu’un
matériel adapté, conçu pour assurer la sécurité du vétérinaire et le mettre à l’abri des
morsures qu’il convient de ne jamais négliger.

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